半乳糖凝集素-9(Gal-9)介导的免疫调节作用在肝脏疾病中的研究进展
DOI: 10.12449/JCH240132
Research advances in the immunomodulatory mechanism of galectin-9 and its role in liver diseases
-
摘要: 半乳糖凝集素-9(Gal-9)是能够特异性识别、结合半乳糖苷的半乳糖凝集素家族成员之一。近年研究发现,Gal-9在肝脏中高水平表达,有助于维持肝内免疫稳态并在多种肝脏疾病中发挥生物学功能。本文综述了Gal-9的免疫调节功能及其在不同肝脏疾病中的作用。Gal-9在不同肝脏疾病中通过多种途径发挥重要的生物学功能,基于对Gal-9具体免疫调节机制和功能的研究,有助于发现Gal-9在肝脏疾病中的治疗作用。Abstract: Galectin-9 (Gal-9) is a member of the galectin family that can specifically recognize and bind to galactosides. Recent studies have shown that Gal-9 is highly expressed in the liver and can help to maintain intrahepatic immune homeostasis and perform biological functions in various liver diseases. This article reviews the immunomodulatory functions of Gal-9 and its role in different liver diseases. Studies have shown that Gal-9 has important biological functions in different liver diseases through multiple pathways. Research on the specific immunomodulatory mechanisms and functions of Gal-9 may help to discover the therapeutic role of Gal-9 in liver diseases.
-
Key words:
- Galectin-9 /
- Immunomodulation /
- Liver Diseases
-
原发性胆汁性胆管炎(primary biliary cholangitis,PBC)是一种慢性进行性胆汁淤积性自身免疫性肝病。其特点是肝内胆管破坏伴门静脉炎症和瘢痕形成[1]。目前研究[2]显示,国内PBC发病率呈现上升趋势。近年来研究发现脂质代谢异常是PBC的重要并发症之一,PBC患者胆汁分泌和肠肝胆盐循环进行性紊乱,导致胆汁酸在体循环积聚,且血液中胆汁酸积聚在PBC中伴随血脂异常。PBC患者伴发高胆固醇血症可能是身体的代偿反应,发挥洗涤作用中和进入体循环的胆汁酸[3]。有关脂质代谢在PBC中作用的研究较少,目前研究表明,脂质代谢紊乱参与PBC进展,并对其预后有重要作用。本文回顾了近年来脂质代谢紊乱在PBC中的研究进展,以期为PBC治疗提供依据。
1. PBC合并脂质代谢异常的特征
PBC合并脂质代谢异常较为常见,约76%的PBC患者合并血脂异常[4]。PBC脂质代谢异常与肝内胆管上皮细胞亚细胞结构损伤和胆汁分泌及肝-肠循环中断导致的胆汁酸代谢改变有关。进行性肝内胆汁淤积导致十二指肠中胆汁酸释放不足;同时肝细胞和血浆中胆汁酸蓄积增加,最终引起PBC患者血脂异常。因此,胆汁酸代谢障碍被视为PBC脂质代谢异常的原因之一。PBC合并脂质代谢异常主要有以下4个特征。
1.1 胆固醇异常
PBC患者血脂异常主要表现为胆固醇异常,疾病早期极低密度脂蛋白(VLDL)、低密度脂蛋白(LDL)及高密度脂蛋白(HDL)水平均升高;中期逐渐演变为以LDL及脂蛋白X(LP-X)升高为主,HDL水平下降;随着疾病发展,晚期PBC患者血脂水平逐渐降低。PBC患者血胆固醇升高原因可能为:(1)小胆管损伤及梗阻导致胆汁淤积,胆固醇清除障碍。(2)血清LP-X水平升高,致胆固醇合成负反馈调节障碍。在PBC并发高脂血症患者中,LDL显著升高是血脂谱最主要的变化[5],但因LP-X影响,需区分患者是否为真性LDL升高。此外,肝脏甘油三酯脂肪酶水平降低导致PBC患者HDL水平升高,且HDL水平与心血管疾病风险密切相关。
1.2 LP-X升高
血清LP-X升高是PBC脂质代谢异常特异性表现。LP-X被视为一种异常的LDL,见于胆汁淤积患者[6]。LP-X含有胆汁酸、白蛋白、高比例的非酯化(游离)胆固醇和磷脂,石胆酸是LP-X中胆汁酸的主要成分。不同于正常血脂蛋白双层磷脂结构,LP-X泡状结构由单一磷脂层构成。LP-X载脂蛋白(Apo)含量较少,且不包含ApoB,而ApoB是导致心血管疾病的主要脂蛋白。因缺乏ApoB,LP-X与LDL不能被低密度脂蛋白受体(LDLR)识别清除,也不能诱导胆固醇合成的负反馈调节[7]。此外LP-X与LDL密度相似,常规方法无法区分,因此LP-X的水平升高常被误认为是LDL-胆固醇(LDL-C)增加,临床上需要进一步对LP-X进行检测。
1.3 ApoA-1异常
ApoA-1是HDL的主要成分,决定血HDL水平,介导胆固醇外流。早期PBC患者ApoA-1水平升高,晚期因肝功能受损严重,蛋白合成减少而下降,继而HDL水平下降[1]。
1.4 甘油三酯(TG)异常
TG是一种中性脂质,也是心血管风险的危险因素之一。部分PBC患者TG水平略高于正常,远低于非酒精性脂肪性肝炎[8]。TG的变化可能与脂蛋白脂肪酶活性降低有关[1]。
2. PBC患者具有较低心血管疾病及肝脂肪变风险
在其他代谢异常疾病中,血脂异常时肝脂肪变性的程度增加,且变性程度与心血管事件风险相关。近年有研究[8]发现PBC患者动脉粥样硬化及肝脏脂肪变性程度较其他肝脏疾病为最低,甚至低于健康人群,可能与PBC患者内脏脂肪含量低有关。然而进展中的PBC及高胆固醇血症(胆固醇水平达到中度及以上)患者仍存在心血管疾病风险。因此,临床监测肝脂肪变性的程度对于评估PBC患者发生心血管事件的风险十分重要。
2.1 PBC患者心血管疾病风险较低
(1)与肝脏对HDL摄取排泄和巨噬细胞逆向转运胆固醇水平升高有关。HDL传统上被认为是“好胆固醇”,高水平血HDL与动脉粥样硬化性心血管疾病(atherosclerotic cardiovascular disease,ASCVD)的低风险密切相关,同时HDL还参与了胆固醇的逆向运输——胆固醇从外周流向肝脏继而随粪便排出体外[9]。HDL主要通过蛋白质脂蛋白A1发挥作用,促进胆固醇从脂肪细胞流出,并抑制胆固醇在血管壁的沉积,从而减轻动脉粥样硬化。因此,血浆HDL水平升高有利于PBC患者降低动脉粥样硬化的发生率。(2)与血中LP-X升高有关。LP-X的结构中没有ApoB,而ApoB是导致动脉粥样硬化的主要脂蛋白。此外,LP-X可通过削弱LDL对内皮细胞的氧化作用从而保护内皮完整性,进而降低心血管疾病风险。
2.2 PBC患者肝脂肪变性风险极低
近年一项研究[8]表明在97例PBC患者中,有约10%的患者出现较明显肝脂肪变性。PBC合并肝脂肪变性概率与慢性乙型肝炎(46%)、慢性丙型肝炎(82%)和非酒精性脂肪肝(96%)相比较低[10]。归因如下:(1)PBC患者具有较高水平成纤维细胞生长因子19表达,成纤维细胞生长因子19可提高游离脂肪酸氧化水平并减少肝脏胰岛素相关脂肪酸的合成,降低TG水平和肝脂肪堆积。(2)PBC患者肠道菌群失调及胆汁酸循环障碍常致脂肪泻,减少脂肪吸收[11],肝脂肪沉积减少。此外,总胆红素水平高于4.5 mg/dL的PBC患者易出现严重脂肪泻,表明大部分PBC患者有脂肪吸收障碍。(3)PBC患者Apo水平升高可抑制糖异生,阻止肝脂肪堆积,且Apo具有抗炎作用,可增强胰岛素敏感性同时减少胰岛素抵抗,从而减少肝脂肪变性。(4)有研究[12]表明LP-X升高可以减弱游离胆固醇毒性作用。LP-X结构中缺少ApoB,从而可以绕过肝脏清除体循环中多余的胆汁酸和胆固醇[13]。
3. PBC黄色瘤与脂质代谢异常相关
皮肤黄色瘤是一种常见的皮肤病变,由真皮局部的脂质沉积引起,通常存在脂质代谢的潜在障碍。皮肤黄色瘤的形态提示一种特殊的脂质紊乱。例如结节状、腱状和平面黄色瘤的存在可能与原发性Ⅱ型和Ⅲ型高脂血症有关。较少见的黄色瘤发生在继发性血脂异常的情况下,如PBC的胆汁淤积。76%的PBC患者出现血脂异常,部分原因是LP-X的异常积累,其在血液中携带大量胆固醇,因此患者可能表现出与Ⅱ型或Ⅲ型高脂血症相似的黄色瘤模式[14]。
部分PBC患者出现黄色瘤,多数在上、下眼睑皮肤,手掌皱褶和乳房下。同时也可以在关节、肌腱以及频繁暴露于长时间压力的部位,如肘关节、膝关节和臀部等,皮肤黄色瘤的发生发展与血清总胆固醇水平的升高有关。长期高胆固醇会致皮肤出现黄色瘤表现。当胆固醇水平恢复正常,或在疾病的晚期,由于肝细胞严重损伤和胆固醇合成进一步受损,黄色瘤可能消失,但低脂饮食不能消除黄色瘤。
4. PBC脂质代谢异常是促进炎症反应的因素之一
近年来,对于代谢与炎症关系的研究已成热点。近期有研究[15]表明高脂血症患者血脂水平与炎症标志物水平呈正相关,PBC患者大部分为混合型高脂血症,胆固醇、LDL、HDL、VLDL等均升高。有研究[16]表明在代谢综合征中,代谢紊乱引起的长期促炎状态和内在的免疫机制是促进代谢综合征发生心血管疾病的主要因素。在此从以下几个方面来阐述脂质代谢紊乱对炎症的影响。
4.1 胆固醇积聚对炎症有促进作用
血胆固醇失调会引发过度活跃的全身炎症反应,胆固醇的处理障碍在促进全身炎症和心血管疾病中发挥了重要作用,在银屑病等慢性炎症性疾病中,胆固醇积聚导致炎症进一步发展、心血管疾病风险呈上升趋势[17-18]。虽然PBC中脂质代谢异常未有增加患心血管或其他代谢性疾病风险的明显证据,但脂质代谢异常对慢性炎症起到推动作用。(1)核因子红细胞2相关因子1是内质网中的一种受体并作为胆固醇传感器维持细胞的内稳态。肝脏中,胞内胆固醇负荷过高导致核因子红细胞2相关因子1上调,进而引起ATP结合盒转运蛋白A1的表达增强,遂将多余胆固醇通过HDL输送到细胞外。而未能清除的胆固醇会在细胞内积聚,启动后续炎症反应[19]。在巨噬细胞中,ATP结合盒转运蛋白A1和ATP结合盒转运蛋白G1表达增强可下调Toll样受体,减少NF-κB的表达,炎症小体激活减少。若巨噬细胞缺乏ATP结合盒式蛋白会导致TNF-α表达增强,进一步加强炎症信号转导。(2)高胆固醇可激活髓系细胞中的NOD样受体蛋白3炎症小体,使全身炎症持续存在,也可以加速中性粒细胞外陷阱的形成,导致Th17细胞招募[20]。此外,单核细胞和中性粒细胞溶酶体中胆固醇积聚可致溶酶体不稳定及NOD样受体蛋白3炎症体的下游信号激活,且高胆固醇血症可致髓系细胞向炎症表型转变。PBC患者胆固醇水平升高且胆固醇逆向转运效率提高,因此有关PBC脂质代谢异常与炎症反应的关系需进一步研究。
4.2 血清TG及VLDL升高促进炎症反应
TG是脂肪酸在细胞内和循环中的主要存储形式[21]。肝脏是脂肪酸代谢的中心器官,脂肪酸来源于血浆和/或肝细胞从头生物合成。有研究表明高甘油三酯血症与心血管疾病风险呈正相关,且TG及其代谢产物会引发炎症反应。血中TG水平升高与C反应蛋白升高具有相关性,此外TG含量高的甘油三酯脂蛋白可上调TNF-α水平,从而使人主动脉内皮细胞血管细胞黏附分子1的表达增强、单核细胞黏附并促进巨噬细胞炎症反应[22]。在动脉粥样硬化中,VLDL颗粒通过激活内皮细胞NF-κB信号通路促进炎症反应[23]。此外VLDL通过激活ERK1/2、MAPK激酶1/2和转录因子AP-1,增强脂多糖诱导的巨噬细胞中TNF-α的表达。
4.3 高水平LDL可引起炎症反应
有研究[24]表明在动脉瓣病变中,高脂血症引发的瓣膜炎症是主动脉瓣病变的重要初始过程,且LDL是高脂血症时主动脉瓣内积聚的主要脂蛋白,导致早期主动脉瓣疾病,并激活下游炎症通路,促使单核细胞来源的巨噬细胞募集。
PBC患者多伴混合型高脂血症,然而目前在PBC中血脂各成分异常对于炎症的作用尚不完全清楚,需要进一步研究揭示。PBC中脂质代谢紊乱与炎症关系的研究有助于为PBC患者自身免疫性炎症治疗提供新思路,具有良好的前景。
5. PBC合并脂质代谢异常治疗
大部分PBC患者合并脂质代谢异常,因此PBC患者都应常规进行血脂水平检测,在PBC治疗的基础上对PBC引起的高脂血症进行相应治疗,并应仔细记录病史,阐明个人和家族心血管疾病史并对心血管疾病风险进行评估。针对具有心血管风险的患者应予重视,并予相关药物治疗,以下推荐几种临床常用药及新药。
5.1 熊去氧胆酸(UDCA)
UDCA是一种亲水胆汁酸,是熊胆中的活性成分,于1997年被美国食品药品监督管理局(FDA)批准为治疗PBC的第一种药物。UDCA作为一种亲水胆汁酸,被证实在PBC中具有多重作用,如保护胆管上皮细胞和线粒体完整性,减少促炎细胞因子,改变胆汁酸池,增加亲水胆汁酸比例,改变细胞信号传导、凋亡和血管活性介质,减少促炎细胞因子[25]。据报道[26],接受UDCA治疗的PBC患者10年累积生存率为79.7%,明显高于未接受UDCA治疗患者的60.7%。有研究[27]表明UDCA可以通过降低胆固醇的吸收和合成以及增强法尼醇X受体的活性显著降低血脂水平;且UDCA治疗后发生脂肪变性组织得到改善。另一项研究[28]表明,口服UDCA可以有效降低胆固醇内源性合成以及TG从头合成。美国肝病学会和欧洲肝病学会推荐UDCA的最佳剂量为13~15 mg·kg-1·d-1[29]。此外,在治疗基础上增加UDCA剂量对降低患者生化指标及死亡率无益处。
5.2 奥贝胆酸(OCA)
OCA是初级胆汁酸的异构体,由鹅去氧胆酸衍生而来。在6α位置上有一个乙基取代基,OCA与法尼醇X受体的亲和力约为鹅去氧胆酸的100倍[30]。已有研究[25]证明激活法尼醇X受体可以抑制编码胆固醇7α羟化酶的基因转录,该基因催化胆汁酸的合成。此外,OCA还可以通过降低不同器官的多种细胞因子来控制炎症,减少纤维化。有研究[31]表明OCA治疗可以显著降低患者体质量,但高剂量治疗有17%的概率引起血LDL水平升高,因此应控制临床OCA使用剂量以避免药物副作用。
FDA于2016年批准OCA作为PBC二线治疗方法,用于UDCA临床治疗反应不完全的PBC患者。Ⅲ期POISE研究[32]显示,患者在UDCA治疗的基础上给予OCA治疗1年,ALP、总胆红素等生化指标较对照组明显改善。OCA联合UDCA的生化效应建模表明联合用药比单独使用UDCA更有效,肝脏相关死亡从16.2%下降到5.7%[33]。OCA最常见的不良反应为瘙痒,FDA不良事件报告系统已确定存在OCA治疗患者肝损害和死亡病例,因此接受OCA治疗患者应定期进行肝功能监测。
5.3 他汀类
他汀类药物(即羟甲基戊二酰辅酶A还原酶抑制剂)用于预防血脂异常患者发生心血管疾病,是临床降血脂治疗的一线用药[3]。他汀类药物一方面通过减少肝脏胆固醇合成,最终降低血液LDL-C水平;另一方面通过胆固醇水平反馈调节,将LDL受体外化到肝细胞表面,从LDL和循环中富含TG的脂蛋白中回收胆固醇。有研究[34]表明他汀类药物可使PBC患者的胆汁淤积减轻。尽管PBC患者中有1%~3%在治疗过程中肝功能受损,且存在自身免疫性肝病风险,但大部分患者使用他汀类药物治疗仍可安全、有效地降低血胆固醇水平。阿托伐他汀能缓解多项血脂指标异常,还能使内皮炎症和血管功能得到改善。最近研究[35]表明他汀类可在不增加副作用的情况下改善肝硬化患者预后。综上所述,他汀类药物可在慢性疾病中发挥更好的作用。2018年美国胃肠病学会建议合并血脂异常的肝病患者可合理使用他汀类药物[36]。
5.4 贝特类
贝特类药物最初用于治疗高甘油三酯血症,苯扎贝特能降低血脂水平及降低ALP水平。贝特类与UDCA联合治疗可用于UDCA应答不佳的PBC患者,并改善此类患者临床指标。有研究[37]表明UDCA联合苯扎贝特治疗的PBC患者中若合并肾损伤,苯扎贝特更换为培马贝特可提升治疗效果,显著改善此类患者肾小球滤过率和血肌酐水平,且培马贝特降脂效果优于苯扎贝特,因此合并肾损伤PBC患者可优先考虑。另一项研究[38]表明非诺贝特能更好地改善UDCA治疗反应不全肝硬化PBC患者的肝功能,且安全性和耐受性良好,副作用发生率低,晚期PBC患者可优先考虑。综上,贝特类药物在PBC中治疗血脂异常的作用还需要进一步研究揭示。
5.5 前蛋白转化酶枯草溶菌素9(PCSK9)单克隆抗体
PCSK9是一种主要在肝脏中产生的酶,与存在于肝细胞表面的LDLR结合,导致其降解,随后血浆LDL水平升高[39]。因此,抑制PCSK9导致LDLR数量增加,致使血浆LDL水平下降。在针对PCSK9开发的几种单克隆抗体中,依洛尤单抗和阿莫罗布单抗已被批准临床使用,并在众多临床试验中得到评估。依洛尤单抗和阿莫罗布单抗无论是作为单药治疗,还是与他汀类药物治疗联合使用,或是用于他汀类药物不耐受患者,都可使血浆LDL水平分别降低53%~75%和45%~53%[40]。目前的指南[41]建议对血浆LDL≥70 mg/dL和ASCVD高风险患者使用PCSK9抑制剂。目前PCSK9单克隆抗体在PBC研究中还未应用,在PBC中的作用待进一步揭示。
5.6 苯培多酸
苯培多酸是一种新型的降血脂药物,可抑制胆固醇合成途径中ATP柠檬酸裂解酶的活性。2018年美国心脏协会等多学会制定的胆固醇管理指南[42]建议高危ASCVD患者LDL-C目标低于70 mg/dL。2019年欧洲心脏病学会和欧洲动脉粥样硬化学会指南建议,ASCVD高危患者一级和二级预防的目标LDL-C应低于55 mg/dL[43]。高强度或最大耐受的他汀类药物治疗往往不能达到这一治疗目标,因此需要使用其他非他汀类降血脂药物。最近的临床试验[44]中,苯培多酸和依泽替米贝的固定药物组合可以显著降低LDL水平,且有较高安全性及有效性,这可能成为他汀类药物不耐受患者降低LDL水平的新治疗方案。此外,苯培多酸还能降低超敏C反应蛋白等炎症标志物。2020年2月,FDA批准苯培多酸用于患有家族性高胆固醇血症或已确诊的ASCVD成人[45]。然而苯培多酸也存在一些缺点,包括缺乏心血管疾病数据结果以及药物成本高昂,在未来临床研究中有待解决。目前,苯培多酸在PBC研究中还未应用,其作用有待进一步探索。
6. 小结
临床中有较高比率的PBC患者合并脂质代谢异常,然而PBC患者心血管疾病及肝脂肪变性发生率极低。少数PBC患者有皮肤黄色瘤表现,这与血脂水平密切相关,同时LP-X的出现是PBC特异性表现。由于LP-X的结构与LDL高度相似,因此临床需加以区分。PBC中高脂血症与炎症发展密切相关,脂质代谢异常可促进炎症发展,具体机制还需进一步研究。PBC合并高脂血症患者临床上需要进一步评定心血管疾病风险,不建议常规降血脂治疗。PBC脂质代谢方面的研究目前还较少,需要更多的临床研究及基础研究来进一步阐明脂质代谢异常在PBC疾病发展中的作用及机制,为PBC治疗提供更好的方案。PBC作为自身免疫性肝病的一种,在自身免疫性炎症方面可以进一步深入研究其引起的脂质代谢异常对于免疫功能的影响及作用。
-
[1] TÜRECI O, SCHMITT H, FADLE N, et al. Molecular definition of a novel human galectin which is immunogenic in patients with Hodgkin’s disease[J]. J Biol Chem, 1997, 272( 10): 6416- 6422. DOI: 10.1074/jbc.272.10.6416. [2] LIU D, ZHU HT, LI CZ. Galectins and galectin-mediated autophagy regulation: New insights into targeted cancer therapy[J]. Biomark Res, 2023, 11( 1): 22. DOI: 10.1186/s40364-023-00466-9. [3] BI SG, EARL LA, JACOBS L, et al. Structural features of galectin-9 and galectin-1 that determine distinct T cell death pathways[J]. J Biol Chem, 2008, 283( 18): 12248- 12258. DOI: 10.1074/jbc.M800523200. [4] JIAO JH, JIAO D, YANG F, et al. Galectin-9 expression predicts poor prognosis in hepatitis B virus-associated hepatocellular carcinoma[J]. Aging, 2022, 14( 4): 1879- 1890. DOI: 10.18632/aging.203909. [5] MOAR P, TANDON R. Galectin-9 as a biomarker of disease severity[J]. Cell Immunol, 2021, 361: 104287. DOI: 10.1016/j.cellimm.2021.104287. [6] MONNEY L, SABATOS CA, GAGLIA JL, et al. Th1-specific cell surface protein Tim-3 regulates macrophage activation and severity of an autoimmune disease[J]. Nature, 2002, 415( 6871): 536- 541. DOI: 10.1038/415536a. [7] LI YR. Mechanisms of gal-9/tim-3 mediated immune regulation[D]. Beijing: Academy of Military Medical Sciences, 2011.李育蓉. Gal-9/Tim-3通路介导免疫调节的机制研究[D]. 北京: 中国人民解放军军事医学科学院, 2011. [8] KANDEL S, ADHIKARY P, LI GF, et al. The TIM3/Gal9 signaling pathway: An emerging target for cancer immunotherapy[J]. Cancer Lett, 2021, 510: 67- 78. DOI: 10.1016/j.canlet.2021.04.011. [9] HARWOOD NMK, GOLDEN-MASON L, CHENG LL, et al. HCV-infected cells and differentiation increase monocyte immunoregulatory galectin-9 production[J]. J Leukoc Biol, 2016, 99( 3): 495- 503. DOI: 10.1189/jlb.5A1214-582R. [10] NACE GW, HUANG H, KLUNE JR, et al. Cellular-specific role of toll-like receptor 4 in hepatic ischemia-reperfusion injury in mice[J]. Hepatology, 2013, 58( 1): 374- 387. DOI: 10.1002/hep.26346. [11] WANG F, XU J, LIAO YL, et al. Tim-3 ligand galectin-9 reduces IL-17 level and accelerates Klebsiella pneumoniae infection[J]. Cell Immunol, 2011, 269( 1): 22- 28. DOI: 10.1016/j.cellimm.2011.03.005. [12] ZHIVOTOVSKY B, BURGESS DH, VANAGS DM, et al. Involvement of cellular proteolytic machinery in apoptosis[J]. Biochem Biophys Res Commun, 1997, 230( 3): 481- 488. DOI: 10.1006/bbrc.1996.6016. [13] KASHIO Y, NAKAMURA K, ABEDIN MJ, et al. Galectin-9 induces apoptosis through the calcium-calpain-caspase-1 pathway[J]. J Immunol, 2003, 170( 7): 3631- 3636. DOI: 10.4049/jimmunol.170.7.3631. [14] EGGENHUIZEN PJ, NG BH, OOI JD. Treg enhancing therapies to treat autoimmune diseases[J]. Int J Mol Sci, 2020, 21( 19): 7015. DOI: 10.3390/ijms21197015. [15] WANG F, WAN LG, ZHANG CC, et al. Tim-3-Galectin-9 pathway involves the suppression induced by CD4+CD25+ regulatory T cells[J]. Immunobiology, 2009, 214( 5): 342- 349. DOI: 10.1016/j.imbio.2008.10.007. [16] MENGSHOL JA, GOLDEN-MASON L, ARIKAWA T, et al. A crucial role for Kupffer cell-derived galectin-9 in regulation of T cell immunity in hepatitis C infection[J]. PLoS One, 2010, 5( 3): e9504. DOI: 10.1371/journal.pone.0009504. [17] SEKI M, OOMIZU S, SAKATA KM, et al. Galectin-9 suppresses the generation of Th17, promotes the induction of regulatory T cells, and regulates experimental autoimmune arthritis[J]. Clin Immunol, 2008, 127( 1): 78- 88. DOI: 10.1016/j.clim.2008.01.006. [18] LV K, ZHANG YY, ZHANG MY, et al. Galectin-9 ameliorates Con A-induced hepatitis by inducing CD4(+)CD25(low/int) effector T-cell apoptosis and increasing regulatory T cell number[J]. PLoS One, 2012, 7( 10): e48379. DOI: 10.1371/journal.pone.0048379. [19] DONG Y, YANG CP, PAN F. Post-translational regulations of Foxp3 in treg cells and their therapeutic applications[J]. Front Immunol, 2021, 12: 626172. DOI: 10.3389/fimmu.2021.626172. [20] MO R, FENG XX, WU YN, et al. Hepatocytes paradoxically affect intrahepatic IFN-γ production in autoimmune hepatitis due to Gal-9 expression and TLR2/4 ligand release[J]. Mol Immunol, 2020, 123: 106- 115. DOI: 10.1016/j.molimm.2020.05.014. [21] RANSON T, VOSSHENRICH CAJ, CORCUFF E, et al. IL-15 availability conditions homeostasis of peripheral natural killer T cells[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2003, 100( 5): 2663- 2668. DOI: 10.1073/pnas.0535482100. [22] TANG ZH, LIANG SW, POTTER J, et al. Tim-3/galectin-9 regulate the homeostasis of hepatic NKT cells in a murine model of nonalcoholic fatty liver disease[J]. J Immunol, 2013, 190( 4): 1788- 1796. DOI: 10.4049/jimmunol.1202814. [23] ZENG XJ. Expression and clinical significance of tim-3/galectin-9 signaling pathway in acute leukemia[D]. Urumqi: Xinjiang Medical University, 2021.曾雪娇. Tim-3/Galectin-9信号通路在急性白血病上的表达及临床意义[D]. 乌鲁木齐: 新疆医科大学, 2021. [24] YANG Y, DONG D, XUE QW, et al. Correlation of negative molecules Tim-3 and Galectin-9 with clinicopathological characteristics of cervical cancer[J]. J Xinjiang Med Univ, 2020, 43( 8): 1004- 1008. DOI: 10.3969/j.issn.1009-5551.2020.08.003.杨艳, 董頔, 薛茜文, 等. 负性分子Tim-3和Galectin-9与宫颈癌患者临床病理特征的相关性研究[J]. 新疆医科大学学报, 2020, 43( 8): 1004- 1008. DOI: 10.3969/j.issn.1009-5551.2020.08.003. [25] COLOMB F, GIRON LB, PREMEAUX TA, et al. Galectin-9 mediates HIV transcription by inducing TCR-dependent ERK signaling[J]. Front Immunol, 2019, 10: 267. DOI: 10.3389/fimmu.2019.00267. [26] MANSOUR AA, RAUCCI F, SAVIANO A, et al. Galectin-9 regulates monosodium urate crystal-induced gouty inflammation through the modulation of treg/Th17 ratio[J]. Front Immunol, 2021, 12: 762016. DOI: 10.3389/fimmu.2021.762016. [27] UCHIDA Y, KE BB, FREITAS MCS, et al. T-cell immunoglobulin mucin-3 determines severity of liver ischemia/reperfusion injury in mice in a TLR4-dependent manner[J]. Gastroenterology, 2010, 139( 6): 2195- 2206. DOI: 10.1053/j.gastro.2010.07.003. [28] TSUNG A, SAHAI R, TANAKA H, et al. The nuclear factor HMGB1 mediates hepatic injury after murine liver ischemia-reperfusion[J]. J Exp Med, 2005, 201( 7): 1135- 1143. DOI: 10.1084/jem.20042614. [29] ZHAI Y, SHEN XD, O’CONNELL R, et al. Cutting edge: TLR4 activation mediates liver ischemia/reperfusion inflammatory response via IFN regulatory factor 3-dependent MyD88-independent pathway[J]. J Immunol, 2004, 173( 12): 7115- 7119. DOI: 10.4049/jimmunol.173.12.7115. [30] ZHAO LZ, LIANG J, RAO W, et al. Cross-regulation by TLR4 and T cell Ig mucin-3 determines severity of liver injury in a CCl4-induced mouse model[J]. Scand J Immunol, 2020, 91( 4): e12851. DOI: 10.1111/sji.12851. [31] LIU YX, JI HF, ZHANG Y, et al. Recipient T cell TIM-3 and hepatocyte galectin-9 signalling protects mouse liver transplants against ischemia-reperfusion injury[J]. J Hepatol, 2015, 62( 3): 563- 572. DOI: 10.1016/j.jhep.2014.10.034. [32] HASSAN A, FONTANA RJ. The diagnosis and management of idiosyncratic drug-induced liver injury[J]. Liver Int, 2019, 39( 1): 31- 41. DOI: 10.1111/liv.13931. [33] ROSEN HR, BIGGINS SW, NIKI T, et al. Association between plasma level of galectin-9 and survival of patients with drug-induced acute liver failure[J]. Clin Gastroenterol Hepatol, 2016, 14( 4): 606- 612.e3. DOI: 10.1016/j.cgh.2015.09.040. [34] ROSEN HR. Emerging concepts in immunity to hepatitis C virus infection[J]. J Clin Invest, 2013, 123( 10): 4121- 4130. DOI: 10.1172/JCI67714. [35] YANG XF, WANG LX, HUANG CX, et al. Mechanism of gamma-chain cytokines in regulating the expression of T-cell immunoglobulin and mucin domain-containing molecule 3 in CD8+ T cells of chronic hepatitis B patients[J]. J Clin Hepatol, 2021, 37( 5): 1059- 1064. DOI: 10.3969/j.issn.1001-5256.2021.05.017.杨晓飞, 王临旭, 黄长形, 等. γ链细胞因子对慢性乙型肝炎患者T淋巴细胞免疫球蛋白黏蛋白分子3表达调控的诱导机制[J]. 临床肝胆病杂志, 2021, 37( 5): 1059- 1064. DOI: 10.3969/j.issn.1001-5256.2021.05.017. [36] NEBBIA G, PEPPA D, SCHURICH A, et al. Upregulation of the Tim-3/galectin-9 pathway of T cell exhaustion in chronic hepatitis B virus infection[J]. PLoS One, 2012, 7( 10): e47648. DOI: 10.1371/journal.pone.0047648. [37] GOLDEN-MASON L, PALMER BE, KASSAM N, et al. Negative immune regulator Tim-3 is overexpressed on T cells in hepatitis C virus infection and its blockade rescues dysfunctional CD4+ and CD8+ T cells[J]. J Virol, 2009, 83( 18): 9122- 9130. DOI: 10.1128/JVI.00639-09. [38] McMAHAN RH, GOLDEN-MASON L, NISHIMURA MI, et al. Tim-3 expression on PD-1+ HCV-specific human CTLs is associated with viral persistence, and its blockade restores hepatocyte-directed in vitro cytotoxicity[J]. J Clin Invest, 2010, 120( 12): 4546- 57. DOI: 10.1172/JCI43127. [39] LAI JH, LUO SF, WANG MY, et al. Translational implication of galectin-9 in the pathogenesis and treatment of viral infection[J]. Int J Mol Sci, 2017, 18( 10): 2108. DOI: 10.3390/ijms18102108. [40] LIU SY, XU C, YANG F, et al. Natural killer cells induce CD8+ T cell dysfunction via galectin-9/TIM-3 in chronic hepatitis B virus infection[J]. Front Immunol, 2022, 13: 884290. DOI: 10.3389/fimmu.2022.884290. [41] LIBERAL R, GRANT CR, HOLDER BS, et al. The impaired immune regulation of autoimmune hepatitis is linked to a defective galectin-9/tim-3 pathway[J]. Hepatology, 2012, 56( 2): 677- 686. DOI: 10.1002/hep.25682. [42] JIANG Y, HAN QJ, ZHAO HJ, et al. The mechanisms of HBV-induced hepatocellular carcinoma[J]. J Hepatocell Carcinoma, 2021, 8: 435- 450. DOI: 10.2147/JHC.S307962. [43] LI H, WU K, TAO KX, et al. Tim-3/galectin-9 signaling pathway mediates T-cell dysfunction and predicts poor prognosis in patients with hepatitis B virus-associated hepatocellular carcinoma[J]. Hepatology, 2012, 56( 4): 1342- 1351. DOI: 10.1002/hep.25777. [44] GOLDEN-MASON L, MCMAHAN RH, STRONG M, et al. Galectin-9 functionally impairs natural killer cells in humans and mice[J]. J Virol, 2013, 87( 9): 4835- 4845. DOI: 10.1128/JVI.01085-12. [45] FUJITA K, IWAMA H, SAKAMOTO T, et al. Galectin-9 suppresses the growth of hepatocellular carcinoma via apoptosis in vitro and in vivo[J]. Int J Oncol, 2015, 46( 6): 2419- 2430. DOI: 10.3892/ijo.2015.2941. 期刊类型引用(0)
其他类型引用(2)
-