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转化生长因子β在胰腺癌发生发展中的作用
DOI: 10.3969/j.issn.1001-5256.2022.12.041
Role of transforming growth factor-β in the development and progression of pancreatic cancer
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摘要: 胰腺导管腺癌恶性程度高，起病隐匿，病情进展快，在早期无明显的腹部表现及体征。多数患者就诊时已发展为中晚期，并常伴远处脏器转移，因此手术治疗、放化疗及药物靶向治疗效果通常不佳。近年来研究表明，转化生长因子β(TGFβ)与肿瘤的发生、发展密不可分，在肿瘤细胞的增殖、侵袭、迁移和血管的生成等进程中发挥关键性的调节作用。尽管TGFβ信号能够利用SMAD介导的细胞周期阻滞起到强大的肿瘤抑制作用，但是TGFβ信号也可以通过增强上皮-间质转化、纤维化和免疫逃逸来加速胰腺癌的发生。本文所述胰腺癌均特指为胰腺导管腺癌，旨在对TGFβ在其信号传导中的作用及其相关因子和免疫反应等方面关系的研究予以综述，为今后胰腺癌的靶向治疗提供理论依据。Abstract: Pancreatic ductal adenocarcinoma has a high degree of malignancy, an insidious onset, and rapid progression, with no obvious abdominal manifestations and signs in the early stage. Most patients are already in the advanced stage and have distant organ metastasis at the time of diagnosis, and thus surgical treatment, chemoradiotherapy, and targeted drug therapy often have an unsatisfactory clinical effect. Recent studies have shown that transforming growth factor-β (TGF-β) is closely associated with the development and of tumors and plays a key role in the processes of tumor cell proliferation, invasion, migration, and angiogenesis. Although TGF-β signal can exert a powerful inhibitory effect on tumors through SMAD-mediated cell cycle arrest, TGF-β signal can also accelerate the development of pancreatic cancer by enhancing epithelial-mesenchymal transition, fibrosis, and immune escape. In this article, pancreatic cancer specifically refers to pancreatic ductal adenocarcinoma, and this article reviews the role of TGF-β in its signal transduction and the association of TGF-β with related factors and immune response, so as to provide a theoretical basis for targeted therapy for pancreatic cancer in the future.
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原发性肝癌是肝脏最常见的恶性肿瘤之一，其在我国发病率居恶性肿瘤的第4位，肿瘤相关死亡第2位[1]。肝细胞癌(HCC)是肝癌中的最常见的类型，是目前全球第五大恶性肿瘤。慢性肝脏疾病患者，如患有病毒性肝炎、酒精性肝病、非酒精性脂肪性肝炎等，是HCC的主要高危人群。中国的新发病例数及死亡病例数均占了全球的50%左右，因此HCC严重影响我国人民的健康[2]。
对于肝癌患者的根治性治疗，目前主要有肝切除术(liver resection, LR)和肝移植术(liver transplantation, LT)两种方法[3-4]，2种方法的选择取决于医院和医生的水平、患者的意愿及身体状况等。为了提高对这2种治疗方法结果的认识，更好的指导临床，本文回顾性分析了首都医科大学附属北京佑安医院171例HCC患者治疗后3年的随访资料，比较LR和LT 2种方法的临床治疗效果。
1. 资料与方法
1.1 研究对象
选取2009年3月—2014年3月在本院首次接受LR或LT的HCC患者171例，依据治疗方式的不同分为LR组(n=83)和LT组(n=88)。LT组患者肝癌的分期依照UICC/AJCC第7版及巴塞罗那分期(BCLC)进行。
1.2 纳入与排除标准
纳入标准：(1)病理确诊符合HCC的诊断标准；(2)LR及LT治疗均在适应证内。排除标准：(1)既往有恶性肿瘤病史；(2)术前曾行抗肿瘤治疗；(3)术后有肿瘤残留；(4)合并严重糖尿病、高血压、心脏病、肾脏病等可能影响生存期的疾病。
1.3 随访情况
患者经过门诊及电话随访，随访主要终点为死亡或随访满3年(36个月)，次要终点为检测到肿瘤复发。
1.4 伦理学审查
本研究获得首都医科大学附属北京佑安医院伦理委员会审批，批号：LL-2018-031-K。受试者均签署知情同意书。
1.5 统计学方法
采用SPSS 25.0统计学软件进行数据分析。分类资料组间比较使用χ2检验。比较亚组间无瘤生存期和总生存期的差异使用Kaplan-Meier和log-rank检验。检测影响预后的因素使用单因素和多因素Cox比例风险模型。P<0.05为差异有统计学意义。
2. 结果
2.1 一般资料
171例HCC患者中男142例(83.04%)，女29例(16.96%)。95例(55.56%)患者在50岁以下。3年随访期间共有20例(11.70%)患者失访。3年随访结束时，69例(40.35%)患者肿瘤复发，32例(18.71%)患者发生HCC相关死亡(表 1)。
表 1 肝癌患者的基本资料指标 例数(n=171) 手术类型 χ2值 P值 LR组(n=83) LT组(n=88) 性别(例) 0.192 0.661 男 142 70 72 女 29 13 16 年龄(例) 0.117 0.732 ≤50岁 95 45 50 >50岁 76 38 38 潜在肝病(例) 2.333 0.311 HBV 153 76 77 HCV 17 6 11 其他 1 1 0 肿瘤位置(例) 1.161 0.281 右叶 119 61 58 非右叶或多叶 52 22 30 肿瘤数目(例) 29.649 <0.001 单发 113 38 75 多发 58 45 13 肿瘤大小(例) 46.383 <0.001 <3 cm 72 13 59 3~5 cm 62 43 19 >5 cm 37 27 10 AFP (例) 3.350 0.187 <20 ng/ml 82 42 40 20~400 ng/ml 52 20 32 >400 ng/ml 37 21 16 TNM分期(例) 0.174 0.677 Ⅰ+Ⅱ 117 57 63 Ⅲ+Ⅳ 54 26 25 BCLC肝癌分期(例) 0.057 0.972 A 87 42 45 B 44 22 22 C 40 19 21 Child-Pugh分级(例) 7.833 0.005 C 140 75 65 B+C 31 8 23 病理分级(例) 2.573 0.276 低分化 29 18 11 中分化 113 52 61 高分化 29 13 16 肿瘤复发(例) 4.121 0.042 否 102 43 59 是 69 40 29 HCC所致死亡(例) 0.937 0.333 否 139 65 74 是 32 18 14 从基础数据上可以看出，LT组较LR组的单发肿瘤比例更多、肿瘤更小、Child-Pugh分期更高、复发率更低(P值均<0.05)，而其他的指标如性别、年龄、潜在肝病、肿瘤位置、AFP水平、TNM分期、BCLC肝癌分期和病理分级2组间比较差异均无统计学意义(P值均>0.05)(表 1)。
2.2 无瘤生存期和总生存期
随访3年，LR组患者无瘤生存率是46.02%，而LT组患者的无瘤生存率为80.71%，两组差异具有统计学意义(P=0.006)(图 1)；LR组患者的总生存率是76.44%，LT组患者的总生存率为86.99%，两组比较差异无统计学意义(P=0.219)(图 2)。
2.3 HCC患者结局的影响因素分析
使用Cox生存分析方法分析无瘤生存期、总生存期和临床特征之间的相关性。在无瘤生存期的单因素分析中，治疗方法和TNM分期是无瘤生存期的影响因素(P值均<0.05)(表 2)。多因素分析结果显示，治疗方法和TNM期是HCC患者无瘤生存期的独立预后因素[RR(95% CI)分别为0.239(0.093~0.612)、4.834(2.598~8.993)，P值分别为0.003、<0.001]。在总生存期的单因素分析中，TNM分期是无瘤生存期的影响因素(P<0.001)(表 2)。多因素分析发现TNM分期是HCC患者总生存期的独立预后因素[RR(95% CI)：4.970(2.052~12.037)，P<0.001]。
表 2 肝癌患者无瘤生存期和总生存期的单因素分析指标 无瘤生存期 总生存期 RR 95%CI P值 RR 95%CI P值 性别 男 1.000 1.000 女 0.539 0.213~1.367 0.193 0.474 0.110~2.034 0.315 年龄 ≤50岁 1.000 1.000 >50岁 1.023 0.570~1.838 0.939 0.678 0.281~1.636 0.387 肝病 HBV 1.000 1.000 HCV/其他 0.380 0.092~1.569 0.181 0.872 0.203~3.747 0.854 肿瘤位置 肝右叶 1.000 1.000 其他位置 0.816 0.422~1.581 0.548 0.693 0.254~1.893 0.475 肿瘤数目 单发 1.000 1.000 多发 1.513 0.833~2.751 0.174 1.491 0.628~3.542 0.365 肿瘤大小 <3 cm 1.000 1.000 <3 cm 1.000 1.000 3~5 cm 1.360 0.647~2.860 0.418 2.956 0.890~9.819 0.077 >5 cm 3.877 1.924~7.812 <0.001 5.595 1.721~18.189 0.004 AFP <20 ng/ml 1.000 1.000 20~400 ng/ml 1.862 0.861~4.025 0.114 0.982 1.699~12.123 0.003 >400 ng/ml 3.625 1.804~7.285 <0.001 4.539 1.699~12.123 0.003 TNM分期 Ⅰ-Ⅱ 1.000 1.000 Ⅲ 4.084 2.237~7.455 <0.001 4.985 2.058~12.076 <0.001 BCLC HCC分期 A 1.000 1.000 B 1.778 0.887~3.564 0.003 1.235 0.349~4.378 0.001 C 3.008 1.453~6.230 0.105 0.003 5.566 2.052~15.101 0.001 Child-Pugh分级 A 1.000 1.000 B+C 0.446 0.160~1.245 0.123 1.886 0.731~4.864 0.189 病理分期 低分化 1.000 1.000 中/高分化 0.813 0.378~1.750 0.597 0.524 0.203~1.350 0.181 治疗方法 LR 1.000 1.000 LT 3.383 1.334~8.579 0.010 0.474 0.140~1.610 0.232 3. 讨论
肝癌的治疗需要多学科协同、多种方法综合进行。目前临床上常用的肝癌治疗方法包括：LR、LT、局部消融治疗(射频消融治疗术为主)、经导管肝动脉化疗栓塞术、放射治疗、全身治疗(包括分子靶向治疗、免疫治疗、化疗、中医治疗等)等[3-5]。既往认为LT治疗的肝癌患者生存结局更好[5]。但是随着对HCC发生发展的探索、影像诊断水平的提高、局部和全身治疗方法的完善、手术技术的进步和术后多学科诊疗模式的形成，不同治疗下患者的最终结局，也随之而改善，有学者[6-7]提出目前LR治疗肝癌与LT同样取得理想效果。金子铮等[8]研究发现LT较LR治疗肝癌患者的5年生存率的优势，2005年—2011年较1989年—2004年明显缩小(73% vs 61%，77% vs 36%)，他们认为这种优势的缩小是由于手术水平的进步、围手术期对肝硬化治疗的优化和对于复发肿瘤多手段的治疗。除了总体变化趋势外，治疗的结果还和医院的水平、患者的状况等多个因素相关。本研究发现LT较LR治疗肝癌3年后肿瘤的复发率明显降低，而总生存率差别不显著。Shen等[9]回顾分析了1218例LT和2068例LR治疗肝癌的患者得出结论，LT比LR在无瘤生存率和总生存率上都有优势。矫学黎等[7]对352例LR和37例LT治疗的患者进行了统计分析后也得到了相似的结论。本研究中LT组较LR组的肿瘤复发率明显降低，与文献一致。另一项纳入9篇关于LT和LR治疗HCC效果研究的Meta分析[10]结果显示，HCC患者术后第1年两种治疗方法的总生存率相似，术后第5年LR组较LT组总生存率明显降低。这与本研究中两组总生存率的结果稍有差别。该研究还认为，与LR组相比，HCC患者术后3年LT组的获益才开始表现出来，而本研究的随访截点正好是3年，因此本研究结果与其他中心的研究结果并不矛盾。肿瘤复发才是病死率增加的开始，如果延长随访时间，本研究的总生存率也将出现显著性差异。故本研究数据结合文献检索的结果，支持LT较LR治疗肝癌更有优势。
从笔者的基础数据上可以看出，LT组较LR组的单发肿瘤更多、肿瘤更小、Child-Pugh分期更高，而其他的指标如性别、年龄、潜在肝病、肿瘤位置、AFP水平、TNM分期、BCLC肝癌分期和病理分级2组比较差异均无统计学差异，这是因为在选择LT治疗的时候，兼顾疗效与公平，平衡考虑肿瘤患者预后，主观限制了总体的肿瘤数目和大小。LT较LR治疗肝癌患者的另一优势是不用考虑患者的肝功能，可以同时解决肿瘤和肝功能衰竭两大问题，本研究入组的LT患者中有2例是Child-Pugh C级。综上所述，LT更倾向于选择肝功能储备较差的早期肝癌患者，3年无瘤生存率令人满意。
LT也存在一定的缺点，比如供体的缺乏、术中并发症多、药物排异等，为了弥补这些缺点，目前已有较多研究在推动LT的进步，包括移植方法上的改进、治疗适应证的拓展、新型抗排异药物的研发和围手术期处理的优化等[11-14]。
本研究结果还得出TNM分期是无瘤生存期和总生存期的独立预测因素，支持TNM分期在临床上的重要作用，不但可以用于指导治疗方法的选择，还能预测术后结果。但是TNM分期也有缺点，淋巴结或远处脏器转移有时术前和术中难以准确评估，因此更好的判断预后的指标和方法也是研究的热点。
另外，本研究是单中心研究，基于现有的临床资料，还存在着样本量较小、随访时间短、纳入因素不全面等因素，而且对于手术切除范围、肝移植方法、供体类型、术后治疗、医疗成本、并发症情况等因素未纳入其中，局限了研究的意义。希望将来设计多中心、样本量更大的研究来弥补以上不足, 将更有利于临床工作的不断提升。
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[1] General Office of National Health Commission. Standard for diagnosis and treatment of pancreatic cancer (2022 edition)[J]. J Clin Hepatol, 2022, 38(5): 1006-1030. DOI: 10.3969/j.issn.1001-5256.2022.05.007.国家卫生健康委办公厅. 胰腺癌诊疗指南(2022年版)[J]. 临床肝胆病杂志, 2022, 38(5): 1006-1030. DOI: 10.3969/j.issn.1001-5256.2022.05.007. [2] BRAY F, FERLAY J, SOERJOMATARAM I, et al. Global cancer statistics 2018: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries[J]. CA Cancer J Clin, 2018, 68(6): 394-424. DOI: 10.3322/caac.21492. [3] SIEGEL RL, MILLER KD, JEMAL A. Cancer statistics, 2020[J]. CA Cancer J Clin, 2020, 70(1): 7-30. DOI: 10.3322/caac.21590. [4] TANG D, WU Q, ZHANG J, et al. Galectin-1 expression in activated pancreatic satellite cells promotes fibrosis in chronic pancreatitis/pancreatic cancer via the TGF-β1/Smad pathway[J]. Oncol Rep, 2018, 39(3): 1347-1355. DOI: 10.3892/or.2018.6202. [5] KAJDANIUK D, MAREK B, BORGIEL-MAREK H, et al. Transforming growth factor β1 (TGFβ1) in physiology and pathology[J]. Endokrynol Pol, 2013, 64(5): 384-396. DOI: 10.5603/EP.2013.0022. [6] KUMARI A, SHONIBARE Z, MONAVARIAN M, et al. TGFβ signaling networks in ovarian cancer progression and plasticity[J]. Clin Exp Metastasis, 2021, 38(2): 139-161. DOI: 10.1007/s10585-021-10077-z. [7] GALLO-OLLER G, DI SCALA M, ARANDA F, et al. Transforming growth factor beta (TGF-β) activity in immuno-oncology studies[J]. Methods Enzymol, 2020, 636: 129-172. DOI: 10.1016/bs.mie.2019.06.008. [8] ZHAO Y, QIAO W, WANG X, et al. 14-3-3ζ/TGFβR1 promotes tumor metastasis in lung squamous cell carcinoma[J]. Oncotarget, 2016, 7(50): 82972-82984. DOI: 10.18632/oncotarget.12690. [9] FAN JY, WANG J. Expression of Mir-196b and TGFβR1 in pancreatic ductal adenocarcinoma and its significance[J]. Shandong Med J, 2021, 61(10): 53-56. DOI: 10.3969/j.issn.1002-266X.范婧怡, 王健. 胰腺导管腺癌组织miR-196b、TGFβR1表达变化及其意义[J]. 山东医药, 2021, 61(10): 53-56. DOI: 10.3969/j.issn.1002-266X. [10] PRINCIPE DR, DOLL JA, BAUER J, et al. TGF-β: duality of function between tumor prevention and carcinogenesis[J]. J Natl Cancer Inst, 2014, 106(2): djt369. DOI: 10.1093/jnci/djt369. [11] WEISS A, ATTISANO L. The TGFbeta superfamily signaling pathway[J]. Wiley Interdiscip Rev Dev Biol, 2013, 2(1): 47-63. DOI: 10.1002/wdev.86. [12] JIA EC, ZHU WL. Research progress of transforming growth factor β Ⅱ receptor in digestive system tumors. [J]. Chongqing Med J, 2016, 45(23): 3293-3295, 3299. DOI: 10.3969/j.issn.1671-8348.2016.23.046.贾恩朝, 朱武凌. 转化生长因子β Ⅱ型受体在消化系统肿瘤中的研究进展[J]. 重庆医学, 2016, 45(23): 3293-3295, 3299. DOI: 10.3969/j.issn.1671-8348.2016.23.046. [13] GUO W, DONG Z, GUO Y, et al. Association of polymorphisms in transforming growth factor-β receptors with susceptibility to gastric cardia adenocarcinoma[J]. Mol Biol Rep, 2012, 39(4): 4301-4309. DOI: 10.1007/s11033-011-1217-0. [14] BIANKIN AV, WADDELL N, KASSAHN KS, et al. Pancreatic cancer genomes reveal aberrations in axon guidance pathway genes[J]. Nature, 2012, 491(7424): 399-405. DOI: 10.1038/nature11547. [15] CHEN YN, ZHANG XY. Research progress on the role of transforming growth factor β Ⅲ receptor in the development of human tumors[J]. J Modern Oncol, 2022, 30(10): 1907-1910. DOI: 10.3969/j.issn.1672-4992.陈亚楠, 张学彦. 转化生长因子βⅢ型受体在人类肿瘤发生发展中作用的研究进展[J]. 现代肿瘤医学, 2022, 30(10): 1907-1910. DOI: 10.3969/j.issn.1672-4992. [16] TZAVLAKI K, MOUSTAKAS A. TGF-β Signaling[J]. Biomolecules, 2020, 10(3). DOI: 10.3390/biom10030487. [17] YIN Z, MA T, HUANG B, et al. Macrophage-derived exosomal microRNA-501-3p promotes progression of pancreatic ductal adenocarcinoma through the TGFBR3-mediated TGF-β signaling pathway[J]. J Exp Clin Cancer Res, 2019, 38(1): 310. DOI: 10.1186/s13046-019-1313-x. [18] ZOU ML, CHEN ZH, TENG YY, et al. The Smad dependent TGF-β and BMP signaling pathway in bone remodeling and therapies[J]. Front Mol Biosci, 2021, 8: 593310. DOI: 10.3389/fmolb.2021.593310. [19] MARTIN-MALPARTIDA P, BATET M, KACZMARSKA Z, et al. Structural basis for genome wide recognition of 5-bp GC motifs by SMAD transcription factors[J]. Nat Commun, 2017, 8(1): 2070. DOI: 10.1038/s41467-017-02054-6. [20] PRINCIPE DR, DECANT B, MASCARIÑAS E, et al. TGFβ signaling in the pancreatic tumor microenvironment promotes fibrosis and immune evasion to facilitate tumorigenesis[J]. Cancer Res, 2016, 76(9): 2525-2539. DOI: 10.1158/0008-5472.CAN-15-1293. [21] WANG F, XIA X, YANG C, et al. SMAD4 gene mutation renders pancreatic cancer resistance to radiotherapy through promotion of autophagy[J]. Clin Cancer Res, 2018, 24(13): 3176-3185. DOI: 10.1158/1078-0432.CCR-17-3435. [22] SHUGANG X, HONGFA Y, JIANPENG L, et al. Prognostic value of SMAD4 in pancreatic cancer: A meta-analysis[J]. Transl Oncol, 2016, 9(1): 1-7. DOI: 10.1016/j.tranon.2015.11.007. [23] DU Y, ZHOU X, HUANG Z, et al. Meta-analysis of the prognostic value of smad4 immunohistochemistry in various cancers[J]. PLoS One, 2014, 9(10): e110182. DOI: 10.1371/journal.pone.0110182. [24] WANG JD, JIN K, CHEN XY, et al. Clinicopathological significance of SMAD4 loss in pancreatic ductal adenocarcinomas: a systematic review and meta-analysis[J]. Oncotarget, 2017, 8(10): 16704-16711. DOI: 10.18632/oncotarget.14335. [25] KANG Y, LING J, SUZUKI R, et al. SMAD4 regulates cell motility through transcription of N-cadherin in human pancreatic ductal epithelium[J]. PLoS One, 2014, 9(9): e107948. DOI: 10.1371/journal.pone.0107948. [26] LEUNG L, RADULOVICH N, ZHU CQ, et al. Loss of canonical Smad4 signaling promotes KRAS driven malignant transformation of human pancreatic duct epithelial cells and metastasis[J]. PLoS One, 2013, 8(12): e84366. DOI: 10.1371/journal.pone.0084366. [27] LI Y, BASTI A, YALÇIN M, et al. Circadian dysregulation of the TGFβ/SMAD4 pathway modulates metastatic properties and cell fate decisions in pancreatic cancer cells[J]. iScience, 2020, 23(10): 101551. DOI: 10.1016/j.isci.2020.101551. [28] DARDARE J, WITZ A, MERLIN JL, et al. SMAD4 and the TGFβ pathway in patients with pancreatic ductal adenocarcinoma[J]. Int J Mol Sci, 2020, 21(10). DOI: 10.3390/ijms21103534. [29] NEUZILLET C, HAMMEL P, TIJERAS-RABALLAND A, et al. Targeting the Ras-ERK pathway in pancreatic adenocarcinoma[J]. Cancer Metastasis Rev, 2013, 32(1-2): 147-162. DOI: 10.1007/s10555-012-9396-2. [30] BUONATO JM, LAZZARA MJ. ERK1/2 blockade prevents epithelial-mesenchymal transition in lung cancer cells and promotes their sensitivity to EGFR inhibition[J]. Cancer Res, 2014, 74(1): 309-319. DOI: 10.1158/0008-5472.CAN-12-4721. [31] PRINCIPE DR, DIAZ AM, TORRES C, et al. TGFβ engages MEK/ERK to differentially regulate benign and malignant pancreas cell function[J]. Oncogene, 2017, 36(30): 4336-4348. DOI: 10.1038/onc.2016.500. [32] GUO Q. Changes in mitochondrial function during EMT induced by TGFβ-1 in pancreatic cancer[J]. Oncol Lett, 2017, 13(3): 1575-1580. DOI: 10.3892/ol.2017.5613. [33] CHANG CH, PAUKLIN S. ROS and TGFβ: from pancreatic tumour growth to metastasis[J]. J Exp Clin Cancer Res, 2021, 40(1): 152. DOI: 10.1186/s13046-021-01960-4. [34] SANJABI S, OH SA, LI MO. Regulation of the immune response by TGF-β: From conception to autoimmunity and infection[J]. Cold Spring Harb Perspect Biol, 2017, 9(6): a022236. DOI: 10.1101/cshperspect.a022236. [35] MA B, LI JG, WANG J, et al. Promotion effect of miR-106b on invasion and migration of colon cancer cells through targeting TGF-β/Smad pathway[J]. J Jilin Univ(Med Edit), 2021, 47(3): 636-636. DOI: 10.13481/j.1671-587Ⅹ.20210312.马博, 李建刚, 王俊, 等. miR-106b靶向调控TGF-β/Smad通路对结肠癌细胞侵袭和迁移的促进作用[J]. 吉林大学学报(医学版), 2021, 47(3): 636-636. DOI: 10.13481/j.1671-587Ⅹ.20210312. [36] DAVID CJ, MASSAGUÉ J. Contextual determinants of TGFβ action in development, immunity and cancer[J]. Nat Rev Mol Cell Biol, 2018, 19(7): 419-435. DOI: 10.1038/s41580-018-0007-0. [37] ANDERTON MJ, MELLOR HR, BELL A, et al. Induction of heart valve lesions by small-molecule ALK5 inhibitors[J]. Toxicol Pathol, 2011, 39(6): 916-924. DOI: 10.1177/0192623311416259. [38] MELISI D, GARCIA-CARBONERO R, MACARULLA T, et al. Galunisertib plus gemcitabine vs. gemcitabine for first-line treatment of patients with unresectable pancreatic cancer[J]. Br J Cancer, 2018, 119(10): 1208-1214. DOI: 10.1038/s41416-018-0246-z. [39] FAIVRE S, SANTORO A, KELLEY RK, et al. Novel transforming growth factor beta receptor I kinase inhibitor galunisertib (LY2157299) in advanced hepatocellular carcinoma[J]. Liver Int, 2019, 39(8): 1468-1477. DOI: 10.1111/liv.14113. [40] KOVACS RJ, MALDONADO G, AZARO A, et al. Cardiac safety of TGF-β receptor i kinase inhibitor LY2157299 monohydrate in cancer patients in a First-in-Human dose study[J]. Cardiovasc Toxicol, 2015, 15(4): 309-323. DOI: 10.1007/s12012-014-9297-4. 期刊类型引用(1)
1. 宋林泉，梁志宏. 肝门再阻断法在肝切除术后胆漏中的预防效果. 吉林医学. 2024(02): 364-367 . 
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