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胆汁淤积性肝病的病理学诊断

张继平

李守娟, 王丽, 周明, 等 . 经选择性血浆分离器行人工肝治疗低血小板计数慢加急性肝衰竭患者的效果及安全性分析[J]. 临床肝胆病杂志, 2024, 40(6): 1191-1195. DOI: 10.12449/JCH240619.
引用本文: 李守娟, 王丽, 周明, 等 . 经选择性血浆分离器行人工肝治疗低血小板计数慢加急性肝衰竭患者的效果及安全性分析[J]. 临床肝胆病杂志, 2024, 40(6): 1191-1195. DOI: 10.12449/JCH240619.
LI SJ, WANG L, ZHOU M, et al. Efficacy and safety of artificial liver support therapy with a selective plasma separator in low-platelet count patients with acute-on-chronic liver failure[J]. J Clin Hepatol, 2024, 40(6): 1191-1195. DOI: 10.12449/JCH240619.
Citation: LI SJ, WANG L, ZHOU M, et al. Efficacy and safety of artificial liver support therapy with a selective plasma separator in low-platelet count patients with acute-on-chronic liver failure[J]. J Clin Hepatol, 2024, 40(6): 1191-1195. DOI: 10.12449/JCH240619.

胆汁淤积性肝病的病理学诊断

DOI: 10.12449/JCH240605
利益冲突声明:本文不存在任何利益冲突。
详细信息
    通信作者:

    张继平, zjp-zhang@163.com (ORCID: 0009-0000-4878-4607)

Pathological diagnosis of cholestatic liver disease

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    Corresponding author: ZHANG Jiping, zjp-zhang@163.com(ORCID: 0009-0000-4878-4607)
  • 摘要: 胆汁淤积性肝病(CLD)是指各种病因引起的胆汁代谢异常、流出受阻、胆管损伤等肝脏疾病,主要病因包括:药物、毒物、免疫、遗传、梗阻、感染、肿瘤等。胆汁淤积是CLD共有的病理改变,而不同病因淤胆的部位、组织病理及超微结构等改变,具有相对特异性。依据病因,重点阐述自身免疫性胆管炎、遗传代谢性肝病、大胆管病变的病理学特征,引申鉴别其他CLD,以期提高对CLD病理学的认识,助力精准诊疗。

     

  • 慢加急性肝衰竭(acute-on-chronic liver failure,ACLF)是在慢性肝病(包括慢性肝炎或肝硬化)基础上因各种诱因引起的急性肝衰竭,病情进展快,病死率达60%~80%。肝移植是挽救ACLF患者的最终手段,然而由于治疗费用高、供体肝脏少、技术难度较大等问题使其极大程度地受到了限制。近年来,人工肝治疗技术发展迅速,临床疗效肯定。大量研究1-3证明人工肝是治疗ACLF的有效措施。但血液通过管路和血浆分离器时血细胞的成分有一定的破坏,当血小板过低时,有增加出血的危险,在一定程度上限制了人工肝的治疗。由乙烯和乙烯醇共聚物制备的Evacure-4A膜型血浆分离器由于截孔面积小,膜交换面积大,组织相容性好,可以耐受高达250 mmHg的跨膜压,且随物质分子量的加大而筛选系数越来越低,因此血液通过时对血细胞的影响较小。叶俊茂等4研究表明,使用Evacure-4A膜型血浆分离器进行血浆置换治疗慢性重型肝炎伴严重血小板减少患者是安全的。本研究通过对不同分层血小板计数ACLF患者据病情选择不同模式非生物型人工肝治疗,观察其疗效及安全性。

    选取2021年1月—2023年5月入住本院的ACLF患者,根据血小板计数将其分为3组:A组(明显低下组),25×109/L~50×109/L;B组(中等程度低下组),51×109/L~80×109/L;C组(轻度低下组),81×109/L~100×109/L。纳入标准:ACLF诊断符合《肝衰竭诊治指南(2018年版)》5。排除标准:(1)合并肿瘤、妊娠、原发性心源性休克、原发性肾衰竭且规律透析、肝移植患者;(2)血小板计数<25×109/L的患者;(3)活动性出血的患者;(4)合并血液系统恶性病的患者,如血液肿瘤、骨髓抑制;使用具有明确骨髓抑制药物的患者;(5)入院前至住院1周有明确出血的患者;(6)近期有使用抗血小板药物的患者;(7)既往接受过脾脏切除术的患者;(8)不愿参加本研究者。

    1.2.1   内科综合治疗

    包括卧床休息,静脉滴注多烯磷脂酰胆碱、丁二磺酸腺苷蛋氨酸、复方甘草酸苷等保肝及人血白蛋白等支持治疗,乙型肝炎有抗病毒治疗指征者加用恩替卡韦或富马酸替诺福韦二吡呋酯或富马酸丙酚替诺福韦,同时依据病情联合不同模式人工肝治疗。

    1.2.2   人工肝支持治疗

    在持续空气消毒的人工肝治疗室内,心电监护下行股静脉穿刺置入股静脉双腔管建立体外循环,治疗过程中使用低分子肝素抗凝,根据患者凝血时间、体质量、跨膜压、分浆流速及治疗时间调整其剂量,使用Evacure-4A膜型选择性血浆分离器(旭化成医疗株式会社,日本)。治疗方式包括:血浆灌流联合血浆置换(plasma perfusion combined with plasma exchange,PP+PE)、胆红素吸附联合血浆置换(plasma bilirubin adsorption combined with plasma exchange,PBA+PE)、双重血浆分子吸附联合血浆置换(double plasma molecular adsorption combined with plasma exchange,DPMAS+PE):使用德国贝朗Dia Pact CRRT机,采用BS330血浆胆红素吸附器(珠海健帆生物科技股份有限公司)和大分子树脂HA-330 Ⅱ型灌流器(广东丽珠医用生物),治疗过程血流量100~130 mL/min,时间2~3 h6,每次置换血浆量1 500 mL7,在置换血浆前常规应用10%葡萄糖酸钙3 g及地塞米松5 mg静注,预防过敏等不良反应。

    人工肝治疗前后患者临床症状、体征、肝功能、国际标准化比值(INR)、血小板计数,相关检验数据系人工肝后立即采集。采用Labospect 008全自动生化分析仪和迈克生物生化试剂检测肝功能各项指标,包括ALT、AST、Alb、TBil;INR由Sysmex CS-2000血凝仪及武汉中太生物技术有限公司血凝试剂进行检测;血小板计数由Sysmex XF-2000检测。记录治疗过程中的不良反应。

    采用SPSS 19.0软件对数据进行统计分析。符合正态分布的计量资料以x¯±s表示,不符合正态分布的计量资料均经对数转换成正态分布。各组治疗前后比较采用配对t检验。多组间比较采用方差分析,进一步两两比较采用SNK-q检验。计数资料多组间比较采用χ2检验。P<0.05为差异有统计学意义。

    共纳入行人工肝治疗的ACLF患者302例,其中男236例(78.15%),女66例(21.85%),年龄24~87岁,中位年龄51.3岁。A组101例,男82例、女19例,平均年龄(51.75±11.38)岁;B组98例,男75例、女23例,平均年龄(51.53±10.96)岁;C组103例,男81例、女22例,平均年龄(50.72±12.49)岁。3组患者一般资料比较,年龄、性别、治疗前各组INR、Alb差异均无统计学意义(P值均>0.05)(表1)。

    表  1  血小板计数不同分层ACLF患者的一般资料比较
    Table  1.  Comparison of general data of ACLF patients with different levels of platelet count
    组别 例数 男/女(例) 年龄(岁) INR Alb(g/L)
    A组 101 82/19 51.75±11.38 2.11±0.71 27.79±3.76
    B组 98 75/23 51.53±10.96 1.98±0.46 28.79±3.61
    C组 103 81/22 50.72±12.49 2.11±0.77 28.97±3.59
    统计值 χ 2=0.649 F=0.223 F=1.221 F=3.058
    P 0.723 0.804 0.361 0.060
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    302例ACLF患者治疗后有268例临床症状呈不同程度的改善,表现为精神好转,乏力减轻,食欲增加,腹胀缓解,未见明显出血倾向。各组治疗前后比较ALT、AST、TBil呈不同程度下降,肝功能好转(P值均<0.001)。INR呈不同程度降低,各组治疗前后比较,差异亦有统计学意义(P值均<0.05)。血小板计数呈不同程度的下降,但A组治疗前后无统计学差异(P>0.05)(表2)。

    表  2  血小板计数不同分层ACLF患者人工肝治疗前后肝功能、凝血、血小板变化
    Table  2.  Changes of liver function, blood coagulation and platelet count in patients with ACLF before and after artificial liver treatment
    分组 例数 ALT(U/L) AST(U/L) Alb(g/L) TBil(μmol/L) INR 血小板计数(×109/L)
    A组 101
    治疗前 1.97±0.34 2.05±0.33 27.79±3.76 322.30±149.56 2.11±0.71 37.73±6.27
    治疗后 1.78±0.28 1.88±0.31 25.71±2.79 197.25±103.20 1.91±0.66 36.59±7.96
    t 14.755 11.491 9.650 19.182 3.497 1.820
    P <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 0.001 0.072
    B组 98
    治疗前 2.06±0.43 2.09±0.37 28.79±3.61 262.28±113.56 1.98±0.46 66.97±7.64
    治疗后 1.87±0.38 1.90±0.32 25.78±3.89 159.23±78.79 1.86±0.56 62.59±7.37
    t 21.614 19.301 7.878 17.486 3.327 12.993
    P <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 0.001 <0.001
    C组 103
    治疗前 2.37±0.50 2.31±0.44 28.97±3.59 311.16±128.73 2.11±0.77 93.82±5.38
    治疗后 2.11±0.44 2.07±0.36 26.26±3.27 183.96±96.01 1.89±0.80 85.99±12.49
    t 15.965 13.919 8.045 21.750 4.358 8.240
    P <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001
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    A、B、C组行PP+PE患者分别为40例(40%)、44例(45%)、41例(40%);行DPMAS+PE患者分别为32例(32%)、30例(31%)、35例(34%);行PBA+PE患者分别为29例(28%)、24例(24%)、27例(26%)。3组ACLF患者人工肝治疗模式各组间比较差异无统计学意义(χ2=0.957,P=0.916)。

    ACLF患者人工肝治疗中最常见的不良反应为血浆过敏,发生率15.23%(46/302),较少见的不良反应为凝血,发生率0.66%(2/302),其余不良反应为低血压4.64%(14/302)、畏寒寒战0.99%(3/302)。3组患者发生不良反应分别有19例、21例、25例,发生率比较差异无统计学意义(18.81% vs 21.43% vs 24.27%,χ2=0.901,P=0.637)。

    肝脏具有合成、代谢、解毒和生物转化功能,在维持人体正常凝血功能中具有重要作用。肝脏受损时,会导致凝血因子合成减少或其活性降低,进而伴随凝血机制和纤溶功能异常,表现为多种凝血功能障碍,INR也会相应的延长。当前,ACLF是一种无法完全治愈的综合征。具有发病率高、发病机制复杂、治疗难度大、预后极差等特点8。治疗的关键是早期诊断、积极预防、控制疾病诱因。治疗的主要原则是提供衰竭器官的功能支持、促进肝功能恢复。人工肝是目前其他方案无法替代的治疗手段9-10,已被纳入肝衰竭治疗的指南中。血清TBil是反映肝功能损害严重程度的可靠指标,INR是肝衰竭早期预警和病情进展的敏感指标,与患者预后显著相关11-13。杨景毅等14研究表明INR和TBil是影响ACLF患者预后的独立危险因素。本研究结果显示:3组患者治疗前TBil分别由(322.30±149.56)μmol/L、(262.28±113.56)μmol/L、(311.16±128.73)μmol/L下降至治疗后(197.25±103.20)μmol/L、(159.23±78.79)μmol/L、(183.96±96.01)μmol/L,ALT、AST亦呈不同程度下降,肝功能好转,INR分别由治疗前2.11±0.71、1.98±0.46、2.11±0.77降至治疗后1.91±0.66、1.86±0.56、1.89±0.80,且均有统计学差异(P值均<0.05)。说明人工肝治疗能改善ACLF患者的肝功能及INR。3组治疗后约88.74%患者乏力、腹胀等临床症状呈不同程度的改善。在前期的临床研究715-16中,使用不同模式人工肝治疗重型肝炎亦取得了较好的临床效果,包括肝功能好转、凝血功能改善、临床症状减轻。

    ACLF的发病机制尚不明确,近年来大量研究证据表明全身炎症反应是驱动肝病进展的重要因素。Moreau等17研究显示,ACLF患者体内白细胞和急性反应时相蛋白水平更高;Clària等18研究表明,ACLF患者比非ACLF患者有着更高的炎症相关细胞因子和全身氧化应激标志物。人工肝支持系统的主要作用是为患者提供暂时的代谢支持,清除血液中过多的胆红素、内毒素、致炎因子等,维持内环境的稳定,为肝细胞再生创造条件。其原理是将患者的血液引出,通过膜型血浆分离器将血液的有形成分(血细胞)和血浆分离,分离出的血浆按20%~30%的比例丢弃,再补充等量正常人的新鲜血浆并和患者的血细胞混合后由静脉输入,形成循环回路。由于血浆分离的效果受膜的性质、血浆成分、血流量、跨膜压及滤过分数的影响,故选用制膜材料和制膜工艺不同的膜型血浆分离器,所带来的临床效果也不尽相同。如使用聚乙烯磺基制备的Plasman 06膜型血浆分离器进行血浆置换治疗,治疗后血小板平均下降22.17×109/L4。因此,当血小板过低时,血浆置换后有增加出血的危险。人工肝治疗一般要求患者血小板计数在50×109/L以上,而有些肝衰竭患者因有长期肝病史,或伴脾功能亢进,或在肝硬化基础上发生,常伴有明显的血小板减少,血小板计数常在50×109/L以下,当病情需要人工肝治疗时则会受到一定的限制。罗玲等19研究表明人工肝血浆置换治疗中Evacure-4A膜型血浆分离器对血小板无明显影响。王璐等20研究证实人工肝治疗对血小板计数的影响是暂时性的,基线血小板计数>80.5×109/L是降低人工肝治疗后出血风险的最佳界值。本研究根据血小板计数将其分为3组,据患者病情分别选择PP+PE、DPMAS+PE、PBA+PE不同模式人工肝,均使用Evacure-4A膜型选择性血浆分离器,结果显示,B、C组血小板计数治疗前后比较均有统计学差异(P值均<0.001)。3组患者治疗过程中均未发生出血,不良反应发生率无统计学差异(P>0.05)。说明Evacure-4A膜型选择性血浆分离器对血小板影响较小,对血小板明显低下ACLF患者行人工肝治疗是安全的。

    多因素分析发现血小板是慢性肝病患者的独立预后因素之一21。肝病患者引起血小板减少的因素是多种多样的。有研究22表明,肝硬化和肝衰竭患者血小板减少的原因主要是肝脏凝血机制异常引起肝内弥散性血管内凝血形成,导致血小板的凝血消耗所致。许姗姗等23研究表明,ACLF患者基线血小板显著低于正常血小板的范围,血小板变化可能参与了ACLF的发生发展,其原因可能是参与肝脏微循环消耗所致。本研究中302例ACLF患者血小板计数呈不同程度的下降,其机制有待进一步探讨。人工肝治疗对肝衰竭患者的血细胞有一定影响,尤其是对PLT的破坏。选用对血小板影响较小的Evacure-4A膜型选择性血浆分离器,减少了人工肝治疗过程中对血小板的破坏,尤其对血小板计数在25×109/L~50×109/L分层组治疗前后无明显差异,亦未发生出血,在一定程度上拓宽了治疗的条件,对降低不良反应发生率及提高患者的抢救成功率有重要意义,值得临床进一步推广应用。

  • 注: a,×100;b,×200。较多巨细胞变肝细胞,胞体巨大,多核,胞质内可见淤胆性色素颗粒,汇管区小胆管损伤及轻微扩张,间质可见中性粒细胞等炎性细胞浸润。

    图  1  巨细胞变肝细胞(HE染色)

    Figure  1.  Hepatocyte with giant-cell transformation(HE staining)

    注: a,小胆管损伤伴淋巴细胞、浆细胞包围浸润及上皮样细胞肉芽肿,偶见多核巨细胞(HE染色,×100);b,旺炽型胆管炎,胆管上皮细胞嗜酸性化,核固缩,排列不整齐,管壁及管周较多淋巴细胞、浆细胞聚集浸润,散在少许嗜酸性粒细胞(HE染色,×200);c,CK7标记未见小胆管缺失,可见轻微细胆管反应(免疫组化,×100)。

    图  2  PBC典型的病理学特征

    Figure  2.  Typical pathological features of PBC

    注: a,肝硬化,汇管区轻度炎症,小胆管轻度扩张,管周纤维化(HE染色,×20);b,汇管区轻度炎症,小胆管基底膜增厚,周围“洋葱皮样”纤维化,小动脉扩大,管壁轻微增厚,门静脉分支扩张及管周纤维化,汇管区周围肝细胞气球样变性(HE染色,×100);c,免疫组化CK7显示肝细胞胆管化(IHC染色,×100);d,小胆管基底膜增厚(D-PAS染色,×100)。

    图  3  PSC典型的病理学特征

    Figure  3.  Typical histopathological features of PSC

    注: a,肝细胞水肿、脂肪变性、气球样变性,部分胞质呈淡红色颗粒状,腺泡1区少许糖原核肝细胞。汇管区轻度炎症(HE染色,×100);b,肝细胞胞质内较多红色铜颗粒沉积(罗丹宁铜染色,×100);c,肝细胞胞质内线粒体形态不规则,内外膜分类,可见内嵴扩张空泡及圆形高电子致密颗粒。肝细胞胞质内也可见脂滴、含高电子致密度的淤胆性色素颗粒沉积(TEM,×12 000)。

    图  4  肝豆状核变性的组织病理学及超微结构特征

    Figure  4.  Histopathological and ultrastructural characteristics of WD

    注: a,CHF“地图样”纤维化,胆管板畸形,胆汁淤积(HE染色,×40);b,汇管区胆管板畸形,门静脉狭窄、闭塞,肝细胞轻度水肿(HE染色,×100);c,畸形的胆管板内陷于汇管区纤维组织中,门静脉分支狭窄、闭塞(HE染色,×200);d,胆管板畸形,形态不规则,管腔扩张,可见胆栓,间质少许淋巴细胞、浆细胞浸润(HE染色,×200)。

    图  5  CHF典型的组织病理学特征

    Figure  5.  Typical histopathological features of CHF

    注: a,肝细胞及毛细胆管内两种颜色的淤胆颗粒及胆栓,一种“巧克力”色,另一种淡黄色(HE染色,×100);b,偏振光显微镜可见红色双折光中的“Maltese十字”或星状暗区(HE染色,偏振光,×200);c,毛细胆管内可见原卟啉结晶(箭头),呈丝状弧形排列,毛细胆管腔面微绒毛减少,紧密连接延长(TEM,×15 000);d,Kupffer细胞胞质溶酶体内充满丝状原卟啉结晶(箭头),窦周间隙可见胶原纤维束沉积(TEM,×15 000)。

    图  6  EPP的组织病理学及超微结构特征

    Figure  6.  Histopathological and ultrastructural characteristics of EPP

  • [1] JOHNSON CA, GISSEN P, SERGI C. Molecular pathology and genetics of congenital hepatorenal fibrocystic syndromes[J]. J Med Genet, 2003, 40( 5): 311- 319. DOI: 10.1136/jmg.40.5.311.
    [2] ESTRADAS J, PASCUAL-RAMOS V, MARTÍNEZ B, et al. Autoimmune hepatitis with giant-cell transformation[J]. Ann Hepatol, 2009, 8( 1): 68- 70.
    [3] SARCOGNATO S, SACCHI D, GRILLO F, et al. Autoimmune biliary diseases: Primary biliary cholangitis and primary sclerosing cholangitis[J]. Pathologica, 2021, 113( 3): 170- 184. DOI: 10.32074/1591-951X-245.
    [4] ZEN Y, HUBSCHER SG, NAKANUMA Y. Bile duct diseases. BurtAD, FerrellLD, HübscherSG, eds. MacSween’s pathology of the liver[M]. 7th ed. Philadelphia, PA: Elsevier, 2018: 515.
    [5] TAKAHASHI T, MIURA T, NAKAMURA J, et al. Plasma cells and the chronic nonsuppurative destructive cholangitis of primary biliary cirrhosis[J]. Hepatology, 2012, 55( 3): 846- 855. DOI: 10.1002/hep.24757.
    [6] CAREY EJ, ALI AH, LINDOR KD. Primary biliary cirrhosis[J]. Lancet, 2015, 386: 1565- 1575. DOI: 10.1016/S0140-6736(15)00154-3.
    [7] KARLSEN TH, FOLSERAAS T, THORBURN D, et al. Primary sclerosing cholangitis-a comprehensive review[J]. J Hepatol, 2017, 67( 6): 1298- 1323. DOI: 10.1016/j.jhep.2017.07.022.
    [8] HIRSCHFIELD GM, KARLSEN TH, LINDOR KD, et al. Primary sclerosing cholangitis[J]. Lancet, 2013, 382( 9904): 1587- 1599. DOI: 10.1016/S0140-6736(13)60096-3.
    [9] PORTMANN B, ZEN Y. Inflammatory disease of the bile ducts-cholangiopathies: Liver biopsy challenge and clinicopathological correlation[J]. Histopathology, 2012, 60( 2): 236- 248. DOI: 10.1111/j.1365-2559.2011.03853.x.
    [10] COLLING R, VERRILL C, FRYER E, et al. Bile duct basement membrane thickening in primary sclerosing cholangitis[J]. Histopathology, 2016, 68( 6): 819- 824. DOI: 10.1111/his.12857.
    [11] FIEL MI, SIMA HR, AZARIAN A, et al. A morphometric study of the hepatic arterioles in end-stage primary sclerosing cholangitis[J]. Virchows Arch, 2015, 466( 2): 143- 149. DOI: 10.1007/s00428-014-1680-9.
    [12] CARRASCO-AVINO G, SCHIANO TD, WARD SC, et al. Primary sclerosing cholangitis: Detailed histologic assessment and integration using bioinformatics highlights arterial fibrointimal hyperplasia as a novel feature[J]. Am J Clin Pathol, 2015, 143( 4): 505- 513. DOI: 10.1309/AJCPVKFVIPRBXQR2.
    [13] NAKAZAWA T, NAITOH I, HAYASHI K, et al. Diagnostic criteria for IgG4-related sclerosing cholangitis based on cholangiographic classification[J]. J Gastroenterol, 2012, 47( 1): 79- 87. DOI: 10.1007/s00535-011-0465-z.
    [14] ZHANG JP, HOU XT, YIN ZC, et al. Gilbert syndrome: Clinicopathological and genetic analyses of 29 cases[J]. Chin J Diagn Pathol, 2018, 25( 2): 85- 89. DOI: 10.3969/j.issn.1007-8096.2018.02.002.

    张继平, 侯晓涛, 尹自长, 等. Gilbert综合征29例临床病理及基因分析[J]. 诊断病理学杂志, 2018, 25( 2): 85- 89. DOI: 10.3969/j.issn.1007-8096.2018.02.002.
    [15] ATAOLLAHI M, DEHGHANI SM, ANBARDAR MH, et al. Liver histologic changes in children with type 1 of Crigler-Najjar syndrome[J]. Arkh Patol, 2021, 83( 5): 27- 30. DOI: 10.17116/patol20218305127.
    [16] FATA CR, GILLIS LA, PACHECO MC. Liver fibrosis associated with crigler-najjar syndrome in a compound heterozygote: A case report[J]. Pediatr Dev Pathol, 2017, 20( 6): 522- 525. DOI: 10.1177/1093526617697059.
    [17] WU ZB. Ultramicro-pathological diagnostics[M]. Shanghai: Shanghai Scientific& Technical Publishers, 2003.

    武忠弼. 超微病理诊断学[M]. 上海: 上海科学技术出版社, 2003.
    [18] LI LT, WANG JS. Advances in the study of progressive familial intrahepatic cholestasis[J]. Infect Dis Inf, 2019, 32( 2): 162- 165. DOI: 10.3969/j.issn.1007-8134.2019.02.017.

    李丽婷, 王建设. 进行性家族性肝内胆汁淤积症研究进展[J]. 传染病信息, 2019, 32( 2): 162- 165. DOI: 10.3969/j.issn.1007-8134.2019.02.017.
    [19] WENG YH, XIONG QF, LIU DX, et al. Clinical and pathological features of progressive familial intrahepatic cholestasis type 3[J]. J Clin Hepatol, 2022, 38( 1): 154- 159. DOI: 10.3969/j.issn.1001-5256.2022.01.024.

    翁宇航, 熊清芳, 刘杜先, 等. 进行性家族性肝内胆汁淤积症3型临床病理特征分析[J]. 临床肝胆病杂志, 2022, 38( 1): 154- 159. DOI: 10.3969/j.issn.1001-5256.2022.01.024.
    [20] QIU YL, GONG JY, FENG JY, et al. Defects in myosin VB are associated with a spectrum of previously undiagnosed low γ-glutamyltransferase cholestasis[J]. Hepatology, 2017, 65( 5): 1655- 1669. DOI: 10.1002/hep.29020.
    [21] GOMEZ-OSPINA N, POTTER CJ, XIAO R, et al. Mutations in the nuclear bile acid receptor FXR cause progressive familial intrahepatic cholestasis[J]. Nat Commun, 2016, 7: 10713. DOI: 10.1038/ncomms10713.
    [22] HALAWI A, IBRAHIM N, BITAR R. Triggers of benign recurrent intrahepatic cholestasis and its pathophysiology: A review of literature[J]. Acta Gastroenterol Belg, 2021, 84( 3): 477- 486. DOI: 10.51821/84.3.013.
    [23] GUINDI M. Wilson disease[J]. Semin Diagn Pathol, 2019, 36( 6): 415- 422. DOI: 10.1053/j.semdp.2019.07.008.
    [24] FANNI D, GUIDO M, GEROSA C, et al. Liver changes in Wilson’s disease: The full spectrum. A report of 127 biopsies from 43 patients[J]. Eur Rev Med Pharmacol Sci, 2021, 25( 12): 4336- 4344. DOI: 10.26355/eurrev_202106_26142.
    [25] ZHAO XY, HE ZY, LIU LW, et al. Comparative study of pathological characteristics of 45 patients with primary and secondary hemochromatosis[J]. Infect Dis Inf, 2019, 32( 2): 127- 131. DOI: 10.3969/j.issn.1007-8134.2019.02.007.

    赵新颜, 何志颖, 刘立伟, 等. 45例原发性与继发性血色病临床病理特点对比研究[J]. 传染病信息, 2019, 32( 2): 127- 131. DOI: 10.3969/j.issn.1007-8134.2019.02.007.
    [26] MIYAMOTO R, JUN SD, OTA K, et al. Neonatal intrahepatic cholestasis caused by citrin deficiency with no hepatic steatosis: A case report[J]. BMC Pediatr, 2021, 21( 1): 237. DOI: 10.1186/s12887-021-02717-w.
    [27] ZHANG JP, CHENG YB, ZHOU XJ, et al. Neonatal intrahepatic cholestasis caused by citrin deficiency: A clinicopathological analysis of two cases[J]. Chin J Diagn Pathol, 2018, 25( 4): 261- 265. DOI: 10.3969/j.issn.1007-8096.2018.04.006.

    张继平, 程艳波, 周晓军, 等. Citrin缺陷导致的新生儿肝内胆汁淤积症2例临床病理观察[J]. 诊断病理学杂志, 2018, 25( 4): 261- 265. DOI: 10.3969/j.issn.1007-8096.2018.04.006.
    [28] FABRIS L, MILANI C, FIOROTTO R, et al. Dysregulation of the Scribble/YAP/β-catenin axis sustains the fibroinflammatory response in a PKHD1-/- mouse model of congenital hepatic fibrosis[J]. FASEB J, 2022, 36( 6): e22364. DOI: 10.1096/fj.202101924R.
    [29] SAXENA R. Practical hepatic pathology: A diagnostic approach[M]. 2nd Ed. Philadelphia: Elsevier, 2018.
    [30] DESMET VJ. Congenital diseases of intrahepatic bile ducts: Variations on the theme“ductal plate malformation”[J]. Hepatology, 1992, 16( 4): 1069- 1083. DOI: 10.1002/hep.1840160434.
    [31] CHEN IY, WHITNEY-MILLER CL, LIAO XY. Congenital hepatic fibrosis and its mimics: A clinicopathologic study of 19 cases at a single institution[J]. Diagn Pathol, 2021, 16( 1): 81. DOI: 10.1186/s13000-021-01142-y.
    [32] GILBERT MA, BAUER RC, RAJAGOPALAN R, et al. Alagille syndrome mutation update: Comprehensive overview of JAG1 and NOTCH2 mutation frequencies and insight into missense variant classification[J]. Hum Mutat, 2019, 40( 12): 2197- 2220. DOI: 10.1002/humu.23879.
    [33] WU LN, SUN LY, ZHU ZJ, et al. Clinical and histological characteristics of patients with Alagille syndrome[J]. Chin Hepatol, 2023, 28( 3): 351- 354, 363. DOI: 10.14000/j.cnki.issn.1008-1704.2023.03.018.

    武丽娜, 孙丽莹, 朱志军, 等. Alagille综合征的临床及病理特征分析[J]. 肝脏, 2023, 28( 3): 351- 354, 363. DOI: 10.14000/j.cnki.issn.1008-1704.2023.03.018.
    [34] CASANOVA-GONZÁLEZ MJ, TRAPERO-MARUGÁN M, JONES EA, et al. Liver disease and erythropoietic protoporphyria: A concise review[J]. World J Gastroenterol, 2010, 16( 36): 4526- 4531. DOI: 10.3748/wjg.v16.i36.4526.
    [35] ANSTEY AV, HIFT RJ. Liver disease in erythropoietic protoporphyria: Insights and implications for management[J]. Gut, 2007, 56( 7): 1009- 1018. DOI: 10.1136/gut.2006.097576.
    [36] MACDONALD DM, GERMAIN D, PERROT H. The histopathology and ultrastructure of liver disease in erythropoietic protoporphyria[J]. Br J Dermatol, 1981, 104( 1): 7- 17. DOI: 10.1111/j.1365-2133.1981.tb01705.x.
    [37] VIJ M, RELA M. Biliary atresia: Pathology, etiology and pathogenesis[J]. Future Sci OA, 2020, 6( 5): FSO466. DOI: 10.2144/fsoa-2019-0153.
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出版历程
  • 收稿日期:  2024-04-02
  • 录用日期:  2024-05-14
  • 出版日期:  2024-06-25
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