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肝衰竭肠道屏障损伤与环鸟苷酸-腺苷酸合酶(cGAS)-干扰素基因刺激因子(STING)信号通路的关系

唐巧 周超 张宁 宫嫚

张志伟, 刘丰, 张和钊, 等. 巨型肝血管平滑肌脂肪瘤伴包膜下破裂误诊为肝细胞癌1例报告[J]. 临床肝胆病杂志, 2025, 41(3): 536-541. DOI: 10.12449/JCH250321.
引用本文: 张志伟, 刘丰, 张和钊, 等. 巨型肝血管平滑肌脂肪瘤伴包膜下破裂误诊为肝细胞癌1例报告[J]. 临床肝胆病杂志, 2025, 41(3): 536-541. DOI: 10.12449/JCH250321.
ZHANG ZW, LIU F, ZHANG HZ, et al. Rare giant hepatic angiomyolipoma with subcapsular rupture misdiagnosed as hepatocellular carcinoma: A case report[J]. J Clin Hepatol, 2025, 41(3): 536-541. DOI: 10.12449/JCH250321.
Citation: ZHANG ZW, LIU F, ZHANG HZ, et al. Rare giant hepatic angiomyolipoma with subcapsular rupture misdiagnosed as hepatocellular carcinoma: A case report[J]. J Clin Hepatol, 2025, 41(3): 536-541. DOI: 10.12449/JCH250321.

肝衰竭肠道屏障损伤与环鸟苷酸-腺苷酸合酶(cGAS)-干扰素基因刺激因子(STING)信号通路的关系

DOI: 10.12449/JCH250328
基金项目: 

“十三五”国家科技重大专项课题 (2018ZX10725-505-001-010);

国家自然科学基金青年项目 (82305067)

利益冲突声明:本文不存在任何利益冲突。
作者贡献声明:宫嫚负责课题设计,拟定写作思路,指导撰写文章并最后定稿;张宁、周超参与收集整理文献材料,修改论文;唐巧负责撰写论文。
详细信息
    通信作者:

    宫嫚, gongman302@ 163.com (ORCID: 0000-0003-2716-4331)

Association between intestinal barrier disruption in liver failure and the cGAS-STING signaling pathway

Research funding: 

Major National Science and Technology Projects in the 13th Five-Year Plan (2018ZX10725-505-001-010);

Natural Science Foundation for the Youth of China (82305067)

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  • 摘要: 肝衰竭是常见的严重肝病综合征,病死率高。肠道屏障作为一个整体,其功能和结构的完整性与肝衰竭发生发展密切相关。环鸟苷酸-腺苷酸合酶(cGAS)-干扰素基因刺激因子(STING)信号通路通过识别病原体入侵及宿主自身细胞损伤产生的DNA,诱导Ⅰ型干扰素的产生,参与先天免疫反应。大量研究表明,cGAS-STING通路的激活对肠道屏障的细胞结构、黏膜成分及共生菌群均能产生影响。本文概述了cGAS-STING信号通路与肝衰竭肠道屏障损伤之间的关系,希望为临床肝衰竭的治疗提供新思路。

     

  • 血清(总)胆红素、血清肌酐和国际标准化比值(INR)等3个客观变量组成的终末期肝病模型(MELD)评分,最初用于预测经颈静脉肝内门体分流术(TIPS)后的存活率1,后续研究发现,MELD评分也可以作为终末期肝病患者病死率的预测指标,以及酒精相关性肝炎(alcohol-associated hepatitis, AH)、食管静脉曲张破裂出血、肝硬化感染、肝硬化患者手术后(包括肝切除、创伤和肝肾综合征)等生存率的预测指标。基于肝病的严重程度,MELD评分在许多国家作为优化器官移植分配政策的基础2。尽管MELD评分最接近理想评分,但也有一些局限性,不能准确预测15%~20%终末期肝病患者的生存率。近年来发展分化出具有各自优点的MELD评分,包括MELD 2.0(MELD-Na)3、MELD3.04,以及MELD-Na+CRP+vWF-Ag5、MELD-GRAIL-Na6等,并有多个自动计算的应用程序。尽管每一种MELD评分在大多数情况下具有相似的预后价值,但在某些特定情况下,它们的益处可能是异质的。因此,进一步确定每一种MELD评分的适应证至关重要。

    既往预测TIPS术后存活率多采用CTP评分。但CTP评分系统有诸多的不足之处,主要是使用了肝性脑病和腹水两个主观变量7。梅奥诊所的专家对美国4家医疗中心的231例接受选择性TIPS手术的患者进行了生存率研究,Cox比例风险回归分析发现,胆红素和肌酐的血清浓度、INR及潜在肝病的病因是接受选择性TIPS手术患者生存率的预测因素,并命名为梅奥TIPS模型。其计算公式为R=0.957×ln(肌酐mg/dL)+0.378×ln (胆红素mg/dL)+1.120×ln (INR)+0.643×病因(胆汁性或酒精性0,其他1)。梅奥TIPS模型>1.8的患者中位生存期为3个月或更短。在预测生存率方面,该模型优于CTP评分,并在来自荷兰的71例患者中得到独立验证8。该模型不仅是终末期肝病死亡风险的可靠指标,还适合用作肝移植器官分配优先顺序的选择。研究者将原有的梅奥TIPS公式乘以10,四舍五入接近整数,R=3.8×ln (胆红素mg/dL)+11.2×ln (INR)+9.6×ln (肌酐mg/dL)+6.4×病因(胆汁性或酒精性0,其他1),并将该模型正式命名为MELD9

    从2002年2月开始美国器官获取和移植网络(organ procurement and transplantation network,OPTN)委员会正式批准采用MELD评分作为国家肝移植器官分配优先顺序的主要风险分层工具10。最初的效果使登记等待移植人数减少12%,等待名单上的死亡人数减少3.5%11-13;移植物1年存活率从1998年的79.5%提高到2007年的85.6%,患者存活率从85.4%提高到89.4%14。2006年12月,欧洲国家也实施了基于MELD的器官分配,整个欧洲地区等待移植名单的病死率显著降低15

    MELD评分作为疾病严重程度的客观量表,也有助于慢性肝病非移植患者的管理,包括预测无肝硬化患者的病死率和失代偿期肝硬化患者长期生存率16、非移植手术病死率17、慢性肝病患者静脉曲张破裂出血的预后评估18-19等。MELD评分还可预测非对乙酰氨基酚诱导的暴发性肝衰竭患者的病死率19和心力衰竭患者的肝功能障碍程度20等。

    酒精性肝病(ALD)患者与患有其他肝病病因的患者相比,疾病进展更快,且常处于晚期。AH是ALD晚期的一种独特表型,临床表现为黄疸迅速发作或恶化、凝血功能障碍等,如果治疗不及时并出现继发感染,就可能发展为慢加急性肝衰竭,最终导致器官衰竭21。根据肝外器官衰竭的数量不同,1个月的死亡风险为20%~50%22。MELD评分≥21分对预测AH患者的死亡风险具有最高敏感性和特异性,比Maddrey判别函数更具实用性和统计学优势23-24。2024年美国胃肠病学院最新的ALD临床指南中,明确提出MELD是对AH重症程度进行分层的最准确评分22

    尽管MELD评分作为评估终末期肝病患者死亡风险的有效性已在大量研究中得到证实,但在临床实践中仍然存在着一定的局限性1825:MELD评分在评估肝脏疾病患者的紧急程度时,较少考虑等待肝移植的时间,这可能会让一些寻求活体肝移植的患者失去耐心;由于肝癌和代谢疾病患者的化验结果可能正常而得分较低,往往忽略了这些患者移植的迫切性;MELD评分也没有解决肝源不足的根本问题7;实验检查结果的可变性。因此,MELD评分对终末期肝病患者的评估仍然需要不断完善。鉴于MELD的诸多局限性,众多研究者不断探索MELD评分的合理性,相继出现了斯坦福大学的MELD-GRAIL,MELD-GRAIL=28.848+11.183×ln(INR)+ 3.150×ln(胆红素mg/dL)-5.078×ln(eGFR)6和密歇根大学团队的Re-weighted MELD,Re-weighted MELD=1.266×ln(1+肌酐mg/dL)+0.939×ln(1+胆红素mg/dL)+1.658×ln(1+INR)等1

    即便如此,低钠血症和持续腹水MELD评分<21分的患者等待移植前6个月死亡风险仍然超过40%26。后续的研究发现,血清钠<125 mmol/L是患者死亡的强烈独立预测因子,将血清钠添加到MELD中可以提高肝硬化患者3个月和6个月病死率的预测能力,于是提出了“MELD-Na”新模型,即MELD 2.0327。MELD-Na=MELD+1.59×(135-血钠),血清钠的最大值为140 mmol/L,最小值为125 mmol/L27。MELD-Na评分为20分、30分和40分的患者,6个月病死率分别为6%、16%和37%27。MELD-Na对高评分患者的影响不大,而对低评分的患者有重大影响。经过不断优化,新的MELD-Na公式为:MELD-Na=MELD+1.32×(137-血钠)-[0.033×MELD×(137-血钠)]28。比如一个MELD评分为12分且血清钠水平为125 mmol/L的候选人,MELD-Na评分为23.13分,新的MELD评分使患者额外获得11分29。通过对69 213例年龄≥18岁的等待移植患者分析发现,MELD-Na评分≤11分的患者,肝移植生存获益(或缺乏)与血清钠无关,而对于MELD-Na评分>11分的患者,随着血清钠降低,生存获益明显增加29。因此,2016年1月正式应用于美国OPTN的器官分配28

    由于MELD最初是根据接受TIPS的患者数据开发的,并不一定完全适用于肝移植候选者的器官分配,所以梅奥诊所自身也在不断更新系数、改变各变量的上下限并纳入血清钠水平修改MELD评分,以提高捐赠肝脏分配的效率2。两个模型分别是:ReFitMELD=4.082×ln(胆红素mg/dL)+8.485×ln(肌酐mg/dL)+10.671×ln(INR)+ 7.432(胆红素下限为1 mg/dL,INR的上下限被限定为1和3,肌酐的上下限被限定在0.8 mg/dL和3 mg/dL,接受肾脏替代治疗的患者肌酐值设定为3 mg/dL);ReFitMELD-Na=4.258×ln(胆红素)+6.792×ln(肌酐)+ 8.290×ln(INR)+0.652×(140-血钠)-0.194×(140-血钠)×胆红素+6.327。除了与ReFitMELD的修正相同之外,血钠的上下限被限定在125 mmol/L和140 mmol/L,胆红素的上限为20 mg/dL,肌酐的下限为1 mg/dL。用估计的肾小球滤过率(eGFR)代替血清肌酐,可能改善MELD-Na评分对等待移植患者病死率的预测,特别是对于疾病严重程度较高的女性患者,由此开发了MELD-GRAIL-Na模型6,MELD-GRAIL-Na=29.751+10.836×ln(INR)+3.039×ln(胆红素)-5.054×ln(eGFR)-0.372×ln(Na)。胆红素的下限为1 mg/dL(没有设定上限),INR上下限为1和3,血清钠上下限为125 mmol/L与140 mmol/L,eGFR的上下限为15 mL·min-1·1.73 m-2与90 mL·min-1·1.73 m-2。通过GRAIL估计的eGFR和重新估计的MELD-GRAIL-Na模型是3个月内等待移植患者死亡或除名的显著预测因素,评分在27~40分时,MELD-GRAIL-Na是观察到死亡的更好预测指标。与MELD-Na相比,使用MELD-GRAIL-Na可能会影响12%~17%的等待移植患者的预后,使16.7%的等待移植患者获得重新分类6。在后来的一些队列研究中发现,梅奥诊所开发的ReFitMELD-Na模型预测终末期肝病的病死率能力并非优于RefitMELD模型30。与MELD或MELD-Na相比,基于GRAIL的模型也没有明显的差异31

    导致肝硬化患者预后不良的因素中,全身炎症反应综合征(SIRS)也是不可回避的常见问题32-33。SIRS可导致血清肌酐值明显升高,严重影响肝硬化患者的MELD评分及生存率。发生SIRS的患者与细菌感染(P=0.02)、黄疸(P=0.011)、高血清肌酐水平(P=0.04)、高血清胆红素水平(P=0.002)、高INR(P=0.046)相关,显然,这与高MELD评分(P=0.001)和高序贯器官衰竭评分(P=0.003)密切相关,SIRS和MELD共存是终末期肝硬化患者死亡的独立预测因素32-33。将炎症的常用标志物C-反应蛋白(CRP)及反映内皮细胞功能障碍和门静脉高压相关的标志物血管性血友病因子抗原(von Willebrand factor antigen,vWF-Ag)添加到MELD-Na评分中,可以提高肝移植等待名单中病死率的预测534,由此产生了MELD-Na新的评分模型:MELD-Na+CRP+vWF-Ag=([0.141×MELD-Na]+[0.210×CRP]+[0.002×vWF-Ag])×4.65

    尽管MELD-Na评分临床实践中应用效果较好,但仍有缺陷,无法准确预测几个亚组患者的结果,如:等待名单上的患者年龄较大;有更多的非肝病合并症;与男性肝移植候选人相比,在控制MELD-Na评分的研究中,肝移植等待名单上的女性候选人病死率似乎不成比例地增高等635-36。为了解决MELD-Na评分的局限性,梅奥诊所在2021年提出了MELD 3.0评分4。他们利用公开的OPTN数据库中的数据,筛选更广泛的变量,包括年龄、性别、种族、血清钠、肌酐、eGFR、INR、胆红素、白蛋白和身高等。从种族、性别、生理、病理,以及实验误差和常规治疗等方面,对这些变量进行了细致的辨别、排除,最终确定了包括性别、胆红素、血钠、INR、肌酐和白蛋白,以及钠-胆红素和白蛋白-肌酐相互作用项的“最佳模型”,即MELD 3.0。MELD 3.0=1.33(女性)+ 4.56×ln(胆红素)+0.82×(137-血钠)-0.24×(137-血钠×ln(胆红素)+9.09×ln(INR)+11.14×ln(肌酐)+1.85×(3.5-白蛋白)-1.83×(3.5-白蛋白)×ln(肌酐)+64。肌酐和胆红素值的下限设定为1mg/L,INR没有设置下限或上限,血清钠的下限和上限分别为125 mmol/L和137 mmol/L,血清白蛋白的下限和上限分别为1.5 g/dL和3.5 g/dL。MELD 3.0模型中的相互作用项能够在较高肌酐水平下缓解低白蛋白血症的负面影响,这一效应可能有助于降低高MELD评分患者发生不良结局的风险37。MELD 3.0评分于2023年用于肝移植器官分配。在登记时MELD 3.0评分超过40分与等待名单上的病死率增加有关,MELD 3.0评分为40~44分时,30天病死率为58.3%;评分为≥50时,30天病死率为82.4%。MELD 3.0评分可能使肝移植患者的生存获益更大38。而且MELD 3.0评分在预测严重AH患者的短期死亡和长期死亡方面比其他评分系统具有更好的效果39

    MELD 3.0评分的应用可能对女性患者更有利。比如胆红素水平为4 mg/dL、INR为1.2、肌酐为1.0 mg/dL、白蛋白为1.5 mg/dL和血清钠为135 mmol/L的女性患者的MELD-Na评分为15分,MELD 3.0评分为20分。白蛋白可能是一个比较有争议的变量,因为等待肝移植的患者因多种原因(如自发性腹膜炎)需要输注白蛋白。假设医源性输注将白蛋白从1.5 mg/dL增加到3.0 mg/dL,MELD 3.0评分将从20分降至17分,对肝移植等待名单上的患者会造成不利影响40。缓解这一问题的方法,就是对已经被列入移植名单的患者,不需要频繁地重新评分认证41

    自2002年以来一直使用MELD评分来确定肝移植器官分配的优先顺序,极大提高了终末期肝病患者90天的生存率。但在较低的评分下,MELD评分在预测不良结果方面尚不理想,MELD-Na评分在预测等待名单病死率方面优于MELD评分,可以更好地校准和区分肝移植候选者的死亡风险,但仍然无法准确预测几个亚组如女性和儿童候选人的结果,2021年提出的MELD 3.0评分对于接受腹部大手术、TIPS和其他干预措施的肝硬化患者进行风险分层的实用性仍然需要进一步研究。

    无论是MELD、MELD-Na、MELD 3.0,还是MELD为基础的各种评分公式的研究和建议都是基于原始MELD进行计算,而不是MELD-Na2442或MELD 3.043。“终末期肝病模型”顾名思义是评估终末期肝病患者的预后,选择TIPS还是选择肝移植。应用于TIPS或肝移植之外的终末期肝病患者的分层应该是对MELD应用的“扩展”,尤其是AH患者未必都需要TIPS还是肝移植,在AH发病过程中MELD评分的应用非常值得商榷。黄疸是AH患者的特征性表现,经过有效的治疗(如类固醇激素和或N-乙酰半胱氨酸等),绝大部分患者是可以恢复的,MELD评分在25~39分的患者从皮质类固醇中获益最大22。因此,MELD的计算公式中特意将病因为“酒精性或胆汁淤积性”的评分减去6.4分。目前国内外自动计算软件中很少考虑酒精这个特殊病因,存在过度诊断的现状,AH患者过早进入肝移植候选人队列,消耗了稀缺的供肝资源,应引起临床医生的重视。

  • 注: IEL,上皮内淋巴细胞;DC,树突状细胞。

    图  1  肠道屏障组成结构

    Figure  1.  Components of intestinal barrier

  • [1] Liver Failure and Artificial Liver Group, Chinese Society of Infectious Diseases, Chinese Medical Association of Severe Liver Disease and Artificial Liver Group, Chinese Society of Hepatology, Chinese Medical Association. Guideline for diagnosis and treatment of liver failure(2018)[J]. J Clin Hepatol, 2019, 35( 1): 38- 44. DOI: 10.3969/j.issn.1001-5256.2019.01.007.

    中华医学会感染病学分会肝衰竭与人工肝学组, 中华医学会肝病学分会重型肝病与人工肝学组. 肝衰竭诊治指南(2018年版)[J]. 临床肝胆病杂志, 2019, 35( 1): 38- 44. DOI: 10.3969/j.issn.1001-5256.2019.01.007.
    [2] CHEN MJ, LI X, TANG SH. Research progress in multi-dimensional evaluation of liver function in patients with liver failure[J]. Clin J Med Offic, 2023, 51( 9): 901- 903, 907. DOI: 10.16680/j.1671-3826.2023.09.05.

    陈美娟, 李雪, 汤善宏. 多维度评估肝功能在肝衰竭患者预后中研究进展[J]. 临床军医杂志, 2023, 51( 9): 901- 903, 907. DOI: 10.16680/j.1671-3826.2023.09.05.
    [3] CHOPYK DM, GRAKOUI A. Contribution of the intestinal microbiome and gut barrier to hepatic disorders[J]. Gastroenterology, 2020, 159( 3): 849- 863. DOI: 10.1053/j.gastro.2020.04.077.
    [4] QIANG R, LIU XZ, XU JC. The immune pathogenesis of acute-on-chronic liver failure and the danger hypothesis[J]. Front Immunol, 2022, 13: 935160. DOI: 10.3389/fimmu.2022.935160.
    [5] GAN Y, LI XY, HAN SZ, et al. The cGAS/STING pathway: A novel target for cancer therapy[J]. Front Immunol, 2022, 12: 795401. DOI: 10.3389/fimmu.2021.795401.
    [6] ALLAIRE JM, CROWLEY SM, LAW HT, et al. The intestinal epithelium: Central coordinator of mucosal immunity[J]. Trends Immunol, 2018, 39( 9): 677- 696. DOI: 10.1016/j.it.2018.04.002.
    [7] DI TOMMASO N, GASBARRINI A, PONZIANI FR. Intestinal barrier in human health and disease[J]. Int J Environ Res Public Health, 2021, 18( 23): 12836. DOI: 10.3390/ijerph182312836.
    [8] PAONE P, CANI PD. Mucus barrier, mucins and gut microbiota: The expected slimy partners?[J]. Gut, 2020, 69( 12): 2232- 2243. DOI: 10.1136/gutjnl-2020-322260.
    [9] HENDRIKX T, SCHNABL B. Antimicrobial proteins: Intestinal guards to protect against liver disease[J]. J Gastroenterol, 2019, 54( 3): 209- 217. DOI: 10.1007/s00535-018-1521-8.
    [10] LITVAK Y, MON KKZ, NGUYEN H, et al. Commensal enterobacteriaceae protect against Salmonella colonization through oxygen competition[J]. Cell Host Microbe, 2019, 25( 1): 128- 139. e 5. DOI: 10.1016/j.chom.2018.12.003.
    [11] HIIPPALA K, JOUHTEN H, RONKAINEN A, et al. The potential of gut commensals in reinforcing intestinal barrier function and alleviating inflammation[J]. Nutrients, 2018, 10( 8): 988. DOI: 10.3390/nu10080988.
    [12] VANCAMELBEKE M, VERMEIRE S. The intestinal barrier: A fundamental role in health and disease[J]. Expert Rev Gastroenterol Hepatol, 2017, 11( 9): 821- 834. DOI: 10.1080/17474124.2017.1343143.
    [13] WEI Q, HUANG H. Insights into the role of cell-cell junctions in physiology and disease[J]. Int Rev Cell Mol Biol, 2013, 306: 187- 221. DOI: 10.1016/B978-0-12-407694-5.00005-5.
    [14] MOWAT AM, AGACE WW. Regional specialization within the intestinal immune system[J]. Nat Rev Immunol, 2014, 14( 10): 667- 685. DOI: 10.1038/nri3738.
    [15] DELFINI M, STAKENBORG N, VIOLA MF, et al. Macrophages in the gut: Masters in multitasking[J]. Immunity, 2022, 55( 9): 1530- 1548. DOI: 10.1016/j.immuni.2022.08.005.
    [16] MARTÍNEZ-LÓPEZ M, IBORRA S, CONDE-GARROSA R, et al. Microbiota sensing by mincle-syk axis in dendritic cells regulates interleukin-17 and-22 production and promotes intestinal barrier integrity[J]. Immunity, 2019, 50( 2): 446- 461. e 9. DOI: 10.1016/j.immuni.2018.12.020.
    [17] TEZUKA H, OHTEKI T. Regulation of IgA production by intestinal dendritic cells and related cells[J]. Front Immunol, 2019, 10: 1891. DOI: 10.3389/fimmu.2019.01891.
    [18] SPENCER J, BEMARK M. Human intestinal B cells in inflammatory diseases[J]. Nat Rev Gastroenterol Hepatol, 2023, 20( 4): 254- 265. DOI: 10.1038/s41575-023-00755-6.
    [19] MANN ER, LAM YK, UHLIG HH. Short-chain fatty acids: Linking diet, the microbiome and immunity[J]. Nat Rev Immunol, 2024, 24( 8): 577- 595. DOI: 10.1038/s41577-024-01014-8.
    [20] LE N, MAZAHERY C, NGUYEN K, et al. Regulation of intestinal epithelial barrier and immune function by activated T cells[J]. Cell Mol Gastroenterol Hepatol, 2021, 11( 1): 55- 76. DOI: 10.1016/j.jcmgh.2020.07.004.
    [21] YOO JS, OH SF. Unconventional immune cells in the gut mucosal barrier: Regulation by symbiotic microbiota[J]. Exp Mol Med, 2023, 55( 9): 1905- 1912. DOI: 10.1038/s12276-023-01088-9.
    [22] GIL-CRUZ C, PEREZ-SHIBAYAMA C, ONDER L, et al. Fibroblastic reticular cells regulate intestinal inflammation via IL-15-mediated control of group 1 ILCs[J]. Nat Immunol, 2016, 17( 12): 1388- 1396. DOI: 10.1038/ni.3566.
    [23] HOU QH, HUANG JX, AYANSOLA H, et al. Intestinal stem cells and immune cell relationships: Potential therapeutic targets for inflammatory bowel diseases[J]. Front Immunol, 2021, 11: 623691. DOI: 10.3389/fimmu.2020.623691.
    [24] SONNENBERG GF, MONTICELLI LA, ALENGHAT T, et al. Innate lymphoid cells promote anatomical containment of lymphoid-resident commensal bacteria[J]. Science, 2012, 336( 6086): 1321- 1325. DOI: 10.1126/science.1222551.
    [25] LE BOURHIS L, MARTIN E, PÉGUILLET I, et al. Antimicrobial activity of mucosal-associated invariant T cells[J]. Nat Immunol, 2010, 11( 8): 701- 708. DOI: 10.1038/ni.1890.
    [26] OLIVARES-VILLAGÓMEZ D, VAN KAER L. Intestinal intraepithelial lymphocytes: Sentinels of the mucosal barrier[J]. Trends Immunol, 2018, 39( 4): 264- 275. DOI: 10.1016/j.it.2017.11.003.
    [27] KAYAMA H, OKUMURA R, TAKEDA K. Interaction between the microbiota, epithelia, and immune cells in the intestine[J]. Annu Rev Immunol, 2020, 38: 23- 48. DOI: 10.1146/annurev-immunol-070119-115104.
    [28] CHEN BR, NI X, SUN R, et al. Commensal bacteria-dependent CD8αβ+ T cells in the intestinal epithelium produce antimicrobial peptides[J]. Front Immunol, 2018, 9: 1065. DOI: 10.3389/fimmu.2018.01065.
    [29] HOYTEMA VAN KONIJNENBURG DP, REIS BS, PEDICORD VA, et al. Intestinal epithelial and intraepithelial T cell crosstalk mediates a dynamic response to infection[J]. Cell, 2017, 171( 4): 783- 794. e 13. DOI: 10.1016/j.cell.2017.08.046.
    [30] WELLS JM, BRUMMER RJ, DERRIEN M, et al. Homeostasis of the gut barrier and potential biomarkers[J]. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol, 2017, 312( 3): G171- G193. DOI: 10.1152/ajpgi.00048.2015.
    [31] ZHANG B, DILIHUMAER ZYE, ZHANG SY, et al. Progress on pathogenesis and medical treatment of hepatitis B virus-related chronic and acute liver failure[J/CD]. Chin J Liver Dis(Electronic Version), 2023, 15( 1): 28- 33. DOI: 10.3969/j.issn.1674-7380.2023.01.005.

    张斌, 迪丽胡玛尔·扎依尔, 张诗雨, 等. 乙型肝炎相关慢加急性肝衰竭发病机制及治疗进展[J/CD]. 中国肝脏病杂志(电子版), 2023, 15( 1): 28- 33. DOI: 10.3969/j.issn.1674-7380.2023.01.005.
    [32] BIGGINS SW, ANGELI P, GARCIA-TSAO G, et al. Diagnosis, evaluation, and management of ascites, spontaneous bacterial peritonitis and hepatorenal syndrome: 2021 practice guidance by the American association for the study of liver diseases[J]. Hepatology, 2021, 74( 2): 1014- 1048. DOI: 10.1002/hep.31884.
    [33] KIM SE, PARK JW, KIM HS, et al. The role of gut dysbiosis in acute-on-chronic liver failure[J]. Int J Mol Sci, 2021, 22( 21): 11680. DOI: 10.3390/ijms222111680.
    [34] BAJAJ JS, VARGAS HE, REDDY KR, et al. Association between intestinal microbiota collected at hospital admission and outcomes of patients with cirrhosis[J]. Clin Gastroenterol Hepatol, 2019, 17( 4): 756- 765. e 3. DOI: 10.1016/j.cgh.2018.07.022.
    [35] FERNÁNDEZ J, ACEVEDO J, WIEST R, et al. Bacterial and fungal infections in acute-on-chronic liver failure: Prevalence, characteristics and impact on prognosis[J]. Gut, 2018, 67( 10): 1870- 1880. DOI: 10.1136/gutjnl-2017-314240.
    [36] PHILIPS CA, AUGUSTINE P. Gut barrier and microbiota in cirrhosis[J]. J Clin Exp Hepatol, 2022, 12( 2): 625- 638. DOI: 10.1016/j.jceh.2021.08.027.
    [37] FENG X, LIU DY, LI ZY, et al. Bioactive modulators targeting STING adaptor in cGAS-STING pathway[J]. Drug Discov Today, 2020, 25( 1): 230- 237. DOI: 10.1016/j.drudis.2019.11.007.
    [38] BAI JL, LIU F. The cGAS-cGAMP-STING pathway: A molecular link between immunity and metabolism[J]. Diabetes, 2019, 68( 6): 1099- 1108. DOI: 10.2337/dbi18-0052.
    [39] CHEN RH, DU JM, ZHU H, et al. The role of cGAS-STING signalling in liver diseases[J]. JHEP Rep, 2021, 3( 5): 100324. DOI: 10.1016/j.jhepr.2021.100324.
    [40] LUTHER J, KHAN S, GALA MK, et al. Hepatic gap junctions amplify alcohol liver injury by propagating cGAS-mediated IRF3 activation[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2020, 117( 21): 11667- 11673. DOI: 10.1073/pnas.1911870117.
    [41] ZHANG H. The role of autophagy and macrophage polarization mediated by STING pathway activation in the pathogenesis of HBV-related acute liver failure and the establishment of clinical prognosis model[D]. Hefei: Anhui Medical University, 2023.

    张浩. STING通路活化介导自噬及巨噬细胞极化在HBV相关慢加急性肝衰竭发病机制的作用及临床预后模型的建立[D]. 合肥: 安徽医科大学, 2023.
    [42] YU T, CHENG HR, LI XL, et al. Design and synthesis of hederagenin derivatives modulating STING/NF-κB signaling for the relief of acute liver injury in septic mice[J]. Eur J Med Chem, 2023, 245( Pt 1): 114911. DOI: 10.1016/j.ejmech.2022.114911.
    [43] CANESSO MCC, LEMOS L, NEVES TC, et al. The cytosolic sensor STING is required for intestinal homeostasis and control of inflammation[J]. Mucosal Immunol, 2018, 11( 3): 820- 834. DOI: 10.1038/mi.2017.88.
    [44] LOUIE A, BHANDULA V, PORTNOY DA. Secretion of c-di-AMP by Listeria monocytogenes leads to a STING-dependent antibacterial response during enterocolitis[J]. Infect Immun, 2020, 88( 12): e00407-20. DOI: 10.1128/IAI.00407-20.
    [45] ZHANG Q, CHEN QY, YAN CS, et al. The absence of STING ameliorates non-alcoholic fatty liver disease and reforms gut bacterial community[J]. Front Immunol, 2022, 13: 931176. DOI: 10.3389/fimmu.2022.931176.
    [46] ZHANG XF, WU J, LIU QJ, et al. mtDNA-STING pathway promotes necroptosis-dependent enterocyte injury in intestinal ischemia reperfusion[J]. Cell Death Dis, 2020, 11( 12): 1050. DOI: 10.1038/s41419-020-03239-6.
    [47] AL-SADI R, GUO SH, YE DM, et al. TNF-α modulation of intestinal tight junction permeability is mediated by NIK/IKK-α axis activation of the canonical NF-κB pathway[J]. Am J Pathol, 2016, 186( 5): 1151- 1165. DOI: 10.1016/j.ajpath.2015.12.016.
    [48] HU QY, REN HJ, LI GW, et al. STING-mediated intestinal barrier dysfunction contributes to lethal sepsis[J]. EBioMedicine, 2019, 41: 497- 508. DOI: 10.1016/j.ebiom.2019.02.055.
    [49] MARTIN GR, BLOMQUIST CM, HENARE KL, et al. Stimulator of interferon genes(STING) activation exacerbates experimental colitis in mice[J]. Sci Rep, 2019, 9( 1): 14281. DOI: 10.1038/s41598-019-50656-5.
    [50] SCHAUPP L, MUTH S, ROGELL L, et al. Microbiota-induced type I interferons instruct a poised basal state of dendritic cells[J]. Cell, 2020, 181( 5): 1080- 1096. e 19. DOI: 10.1016/j.cell.2020.04.022.
    [51] GUTIERREZ-MERINO J, ISLA B, COMBES T, et al. Beneficial bacteria activate type-I interferon production via the intracellular cytosolic sensors STING and MAVS[J]. Gut Microbes, 2020, 11( 4): 771- 788. DOI: 10.1080/19490976.2019.1707015.
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出版历程
  • 收稿日期:  2024-06-07
  • 录用日期:  2024-07-17
  • 出版日期:  2025-03-25
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