
原发性肝癌作为临床最为常见的恶性肿瘤之一,具有较高的发病率和死亡率,是最为常见的癌症相关性死亡原因之一[1-2]。由于原发性肝癌发病隐匿,患者缺乏早期典型的临床症状,大部分患者在临床确诊时已经处于疾病的中晚期阶段,能够进行根治性手术切除的患者比例甚至不足20%。经肝动脉化疗栓塞术(transcatheter arterial chemoembolization, TACE)是中晚期原发性肝癌患者治疗的主要手段,可有效改善患者临床预后[3-5]。然而,当前仍缺乏评价中晚期肝癌TACE术后预后的有效方式。研究[6-7]显示,表皮生长因子受体(epidermal growth factor receptor, EGFR)信号通路是原发性肝癌发生发展的关键。KRAS基因属于Ras原癌基因家族中的一员,不仅是抗EGFR靶向治疗选择的重要依据,同时也可能成为患者预后的预测因子。本研究探讨KRAS基因状态对TACE治疗中晚期肝癌患者预后的预测价值。
选择2017年4月—2020年5月在海南省第三人民医院接受TACE治疗的中晚期肝癌患者为研究对象。纳入标准:(1)患者均经穿刺活检,临床病理诊断为原发性肝癌患者;(2)心、肺、肾等机体主要器官功能无明显障碍患者;(3)巴塞罗那肝癌临床分期(BCLC)B期或C期患者;(4)肝功能Child-Pugh分级为A级或B级患者;(5)无法接受外科手术治疗切除患者;(6)卡氏(KPS)评分>60分;(7)术前未接受其他治疗。排除标准:(1)合并严重凝血功能障碍患者;(2)大量腹水或顽固性腹水患者;(3)有TACE治疗禁忌证患者;(4)合并远处转移患者。
使用Seldinger法穿刺患者股动脉,插管直至肝总动脉进行造影,以明确肿瘤大小、数目、位置。以微导管超选择插管至支配肝癌病灶的主要供血动脉内,将化疗药物(氟尿嘧啶750 mg/m2,奥沙利铂60 mg/m2)稀释液缓慢注入,然后使用15~25 mL 40%碘化油栓塞肿瘤末梢血管。若有必要可使用明胶海绵颗粒,以尽可能完全阻断患者肿瘤血供。根据患者肿瘤大小、数量以及患者肝功能具体情况确定碘化油及栓塞剂的使用剂量。此外,根据患者情况决定TACE治疗次数,本研究患者治疗2~3次。
TACE手术前,在超声引导下对肝癌组织进行穿刺取材,取5 g左右肿瘤组织,按照QIAamp DNAFFPF Kit试剂盒(Qiagen公司)步骤提取肿瘤组织DNA,使用紫外分光光度计检测提取DNA浓度,然后调节浓度至100 μg/mL,-20 ℃保存待测。扩增KRAS基因12/13号密码子特需特异性引物,根据文献[8]报道,引物序列,正义:5′-CTGTATCAAAGAATGGTCCTGCAC-3′,反义:5′-CTGTATCAAAGAATGGTCCTGCAC-3′。引物及Premix PCR试剂盒购于宝生物工程(大连)有限公司,PCR反应体系50 μL。PCR反应条件:94 ℃ 5 min,94 ℃ 30 s、60 ℃ 30 s、70 ℃ 40 s,共完成30个循环,使用1.5%琼脂糖凝胶电泳分析PCR产物,选取PCR阳性凝胶条带作为目的片段,使用QIAquick PCR Purification Kit(Qiagen公司)对PCR产物回收,然后送至上海基因技术有限公司进行测序分析。
所有患者在接受TACE术后,每月复查肝功能、AFP、肝脏增强CT或MRI,以评估患者肿瘤控制情况以及术后复发情况,记录患者无进展生存期(PFS)以及总体生存期(OS)。PFS指的是从患者TACE术后到观察到疾病进展或发生死亡(由于任何原因)之间的时间;OS指的是从患者TACE术后到患者死亡(由于任何原因)之间的时间。
采用统计学软件SPSS 25.0处理数据。计量资料以x±s表示,两组间比较采用t检验,计数资料两组间比较采用χ2检验,生存分析绘制Kaplan-Meier生存曲线,生存曲线比较采用Log-rank检验,对可能影响患者预后的各因素进行Cox回归分析。P<0.05为差异具有统计学意义。
97例患者中男61例、女36例,年龄30~78岁,平均(56.48±12.31)岁。肿瘤最大径2.89~9.74 cm,平均(7.19±2.08)cm;肿瘤单个89例、≥2个18例。在本组97例晚期肝癌患者中,共检出KRAS基因突变患者34例(35.05%),其中检出12号密码子突变患者21例(61.76%),13号密码子突变患者13例(38.24%)。在检出KRAS基因突变患者中,均为单个碱基的点突变,而并未检出两个或两个以上碱基突变或其他形式的突变(图 1)。
KRAS基因突变型与野生型比较,肝内转移、肿瘤数目的差异均有统计学意义(χ2值分别为3.965、6.593,P值均<0.05)(表 1)。
临床资料 | KRAS突变型 (n=34) |
KRAS野生型 (n=63) |
统计值 | P值 |
性别(例) | χ2=0.370 | 0.543 | ||
男 | 20 | 41 | ||
女 | 14 | 22 | ||
年龄(岁) | 55.12±14.21 | 56.93±10.04 | t=0.730 | 0.468 |
乙型肝炎病史(例) | χ2=0.057 | 0.811 | ||
阴性 | 30 | 56 | ||
阳性 | 4 | 7 | ||
ALT(U/L) | 49.85±14.20 | 51.24±15.22 | t=0.439 | 0.662 |
凝血酶原时间(s) | 12.83±1.84 | 13.02±2.10 | t=0.443 | 0.659 |
总胆红素(mmol/L) | 17.94±3.73 | 18.05±3.16 | t=0.153 | 0.878 |
白蛋白(g/L) | 40.27±6.49 | 40.53±5.98 | t=0.198 | 0.843 |
AFP(ng/L) | 438.95±109.32 | 409.64±97.58 | t=1.353 | 0.179 |
肿瘤大小(cm) | 7.39±2.30 | 7.02±2.15 | t=0.789 | 0.432 |
肝硬化(例) | χ2=0.035 | 0.852 | ||
有 | 27 | 49 | ||
无 | 7 | 14 | ||
肝内转移(例) | χ2=3.965 | 0.047 | ||
有 | 16 | 17 | ||
无 | 18 | 46 | ||
肿瘤数目(例) | χ2=6.593 | 0.010 | ||
单个 | 23 | 56 | ||
多个 | 11 | 7 | ||
腹水(例) | χ2=0.057 | 0.811 | ||
无 | 31 | 55 | ||
有 | 3 | 8 | ||
Child-Pugh分级(例) | χ2=0.056 | 0.812 | ||
A | 24 | 43 | ||
B | 10 | 20 | ||
BCLC分期(例) | χ2=0.074 | 0.785 | ||
B | 22 | 39 | ||
C | 12 | 24 |
对本组97例患者进行追踪随访显示,KRAS基因野生型患者平均PFS为11.35个月,突变型患者平均PFS为19.65个月;KRAS基因野生型患者平均OS为19.18个月,突变型患者平均OS为26.54个月。Kaplan-Meier生存分析结果显示,KRAS基因野生型患者PFS及OS均显著优于KRAS突变型(P值均<0.05)(图 2、3)。
对可能影响患者总体生存预后的各因素进行Cox分析,结果显示,KRAS基因状态(RR=18.273, 95%CI:5.584~98.305)、肝内转移(RR=11.475, 95%CI:3.029~56.490)、肿瘤数目(RR= 10.038, 95%CI:2.973~19.328)、BCLC分期(RR=12.384, 95%CI:2.385~29.305)与患者预后密切相关,为影响患者总体生存预后的重要因素(P值均<0.05)(表 2)。
自变量 | RR | 95%CI | P值 |
性别(男性=0,女性=1) | 2.734 | 0.983~7.935 | 0.283 |
年龄(≥60岁=0,<60岁=1) | 3.038 | 0.627~10.293 | 0.276 |
KRAS基因状态(突变型=0,野生型=1) | 18.273 | 5.584~98.305 | 0.001 |
乙型肝炎病史(有=0,无=1) | 5.484 | 0.719~9.380 | 0.193 |
ALT(≥40 U/L=0,<40 U/L=1) | 2.079 | 0.417~12.953 | 0.389 |
凝血酶原时间(≥12 s=0,<12 s=1) | 1.092 | 0.271~9.182 | 0.849 |
总胆红素(≥18 nmol/L=0,<18 nmol/L=1) |
1.684 | 0.495~7.293 | 0.711 |
白蛋白(≥40 g/L=0,<40 g/L=1) | 2.087 | 0.408~11.235 | 0.419 |
AFP(≥400 ng/L=0,<400 ng/L=1) | 2.193 | 0.602~11.293 | 0.619 |
肿瘤大小(≥7 cm=0,<7 cm=1) | 2.183 | 0.485~7.304 | 0.280 |
肝硬化(有=0,无=1) | 1.804 | 0.198~10.237 | 0.695 |
肝内转移(有=0,无=1) | 11.475 | 3.029~56.490 | 0.018 |
肿瘤数目(单发=0,多发=1) | 10.038 | 2.973~19.328 | 0.021 |
腹水(有=0,无=1) | 2.013 | 0.421~8.106 | 0.174 |
Child-Pugh分级(A=0,B=1) | 2.189 | 0.569~7.491 | 0.209 |
BCLC分期(B=0,C=1) | 12.384 | 2.385~29.305 | 0.011 |
目前,TACE已经成为无法外科切除中晚期肝癌患者的首选治疗方式。肝癌的主要供血为肝动脉供血。经肝动脉碘油注射后,碘油可在肝癌的组织间隙、肝窦以及细小血管内选择性停滞,从而导致癌细胞失去血液供应而导致肿瘤组织缺血坏死[9-10];在碘油中混合化疗药物,从而使化疗药物在肿瘤组织中缓慢释放,延长了化疗药物与肿瘤细胞之间的接触时间,进而显著提高化疗药物治疗效果,同时可显著减小化疗药物对患者全身的不良影响,并阻断肿瘤血供,引起肿瘤组织发生缺血性坏死,进一步增加抗肿瘤疗效[11-12]。研究提出[13-14],采取非手术多模式治疗,尤其对于原发性肝癌患者采取TACE治疗,可有效延长患者生存期,在中晚期肝癌的治疗中具有重要作用。
原发性肝癌是多基因、多分子、多通路间相互作用的结果,因此检测原发性肝癌患者基因突变状况,对于患者治疗反应以及生存预后具有预测价值,从而有助于实现精准化治疗的目的[15-16]。KARS基因突变在原发性肝癌患者中具有着较高的发生率。研究[17-18]显示,原发性肝癌的发生是一种多步骤过程,而在肿瘤恶性发生的整个过程中,均与KRAS基因突变有关。有研究[19-20]认为,KRAS基因突变被认为是原发性肝癌发生的启动性因子,尤其G-A碱基突变,可能在多种恶性肿瘤发生中具有重要作用。
本研究结果显示,在本组97例中晚期肝癌患者中,共检出KRAS基因突变患者34例(35.05%),其中检出12号密码子突变患者21例(61.76%),13号密码子突变患者13例(38.24%),且检出的患者均为单个碱基突变。本组结果与相关研究报道结果基本一致[21]。KRAS基因突变率接近35%,是一种较为常见的基因突变形式。此外,KRAS基因突变与患者肝硬化、肝内转移、肿瘤数目有关。提示KRAS基因突变的存在可能与肝癌疾病的发生发展具有一定的内在联系,从而为KRAS突变可能成为预测患者治疗预后的因素提供一定的基础。
Kaplan-Meier生存分析结果显示,KRAS基因野生型患者PFS及OS均显著优于KRAS突变型。表明了KRAS基因状态与患者TACE术后生存状况密切相关。KRAS基因野生型患者可受上游EGFR信号通路的调控,而当KRAS基因发生点突变时,导致该基因编码P21蛋白的空间结构发生了相应的变化,不再受上游EGFR信号的调控。KRAS基因突变亚型不同,可能也会导致该基因的空间构象发生变化,引起相应的调节细胞内信号通路不同,从而影响化疗药物的结合位点,也可能导致患者对化疗药物的敏感性有所差别,进而影响患者预后。
同时,本研究进一步对可能影响患者术后预后的各因素进行Cox回归分析,结果显示,KRAS基因状态、肝内转移、肿瘤数目、BCLC分期进入回归模型,为影响患者总体生存预后的重要因素。肿瘤数目、肝内转移以及BCLC分期均可有效提示原发性肝癌患者自身状态及肿瘤的进展情况,故而可影响患者预后,而KRAS基因状态同样进入了Cox回归模型,提示KRAS基因状态也对患者临床预后有着重要的影响。此外,通过Kaplan-Meier生存分析以及Cox多因素分析,进一步确定了KRAS基因状态与患者TACE术后预后具有密切关系,可能成为预测患者术后预后的重要因素之一。KRAS基因突变,可能是导致患者术后预后较差的因素,因此关注肝癌TACE患者KRAS基因状态,对于提前制订相关治疗计划具有重要价值。
但是由于本研究纳入样本量相对较小,研究结果可能存在一定的偏差,后期研究将进一步扩大研究样本量,以获得更为可靠的临床研究数据。
综上所述,KRAS基因突变在原发性肝癌中较为常见,与患者TACE术后不良预后密切相关,可成为患者临床预后监测的潜在指标。
[1] |
CASULLI A, BARTH T, TAMAROZZI F. Echinococcus multilocularis[J]. Trends Parasitol, 2019, 35(9): 738-739. DOI: 10.1016/j.pt.2019.05.005.
|
[2] |
WEN H, VUITTON L, TUXUN T, et al. Echinococcosis: Advances in the 21st Century[J]. Clin Microbiol Rev, 2019, 32(2): e00075-18. DOI: 10.1128/CMR.00075-18.
|
[3] |
CAI H, GUAN Y, MA X, et al. Epidemiology of echinococcosis among schoolchildren in golog tibetan autonomous prefecture, qinghai, China[J]. Am J Trop Med Hyg, 2017, 96(3): 674-679. DOI: 10.4269/ajtmh.16-0479.
|
[4] |
WANG J, GOTTSTEIN B. Immunoregulation in larval Echinococcus multilocularis infection[J]. Parasite Immunol, 2016, 38(3): 182-192. DOI: 10.1111/pim.12292.
|
[5] |
GLATMAN ZARETSKY A, TAYLOR JJ, KING IL, et al. T follicular helper cells differentiate from Th2 cells in response to helminth antigens[J]. J Exp Med, 2009, 206(5): 991-999. DOI: 10.1084/jem.20090303.
|
[6] |
HE L, GU W, WANG M, et al. Extracellular matrix protein 1 promotes follicular helper T cell differentiation and antibody production[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2018, 115(34): 8621-8626. DOI: 10.1073/pnas.1801196115.
|
[7] |
CROTTY S. T follicular helper cell biology: A decade of discovery and diseases[J]. Immunity, 2019, 50(5): 1132-1148. DOI: 10.1016/j.immuni.2019.04.011.
|
[8] |
CROTTY S. T follicular helper cell differentiation, function, and roles in disease[J]. Immunity, 2014, 41(4): 529-542. DOI: 10.1016/j.immuni.2014.10.004.
|
[9] |
SONG W, CRAFT J. T follicular helper cell heterogeneity: Time, space, and function[J]. Immunol Rev, 2019, 288(1): 85-96. DOI: 10.1111/imr.12740.
|
[10] |
VINUESA CG, LINTERMAN MA, YU D, et al. Follicular helper T cells[J]. Annu Rev Immunol, 2016, 34: 335-368. DOI: 10.1146/annurev-immunol-041015-055605.
|
[11] |
HELMOLD HAIT S, VARGAS-INCHAUSTEGUI DA, MUSICH T, et al. Early T follicular helper cell responses and germinal center reactions are associated with viremia control in immunized rhesus macaques[J]. J Virol, 2019, 93(4). DOI: 10.1128/JVI.01687-18.
|
[12] |
XU W, ZHAO X, WANG X, et al. The Transcription factor tox2 drives T follicular helper cell development via regulating chromatin accessibility[J]. Immunity, 2019, 51(5): 826-839.e5. DOI: 10.1016/j.immuni.2019.10.006.
|
[13] |
WANG B, LI H, SA RL, et al. The expression of ICOS in Tfh cells and the effect of ICOS blocker on the expression of IL-21 in Tfh cells with liver fibrosis[J]. Int J Immunol, 2020, 43(5): 483-487. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1673-4394.2020.05.001.
王波, 李慧, 萨茹拉, 等. 四氯化碳诱导肝纤维化小鼠Tfh中ICOS的表达及ICOS阻断剂对IL-21表达的影响[J]. 国际免疫学杂志, 2020, 43(5): 483-487. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1673-4394.2020.05.001.
|
[14] |
LINDQVIST M, van LUNZEN J, SOGHOIAN DZ, et al. Expansion of HIV-specific T follicular helper cells in chronic HIV infection[J]. J Clin Invest, 2012, 122(9): 3271-3280. DOI: 10.1172/JCI64314.
|
[15] |
VELU V, MYLVAGANAM G, IBEGBU C, et al. Tfh1 cells in germinal centers during chronic HIV/SIV infection[J]. Front Immunol, 2018, 9: 1272. DOI: 10.3389/fimmu.2018.01272.
|
[16] |
GLATMAN ZA, TAYLOR JJ, KING IL, et al. T follicular helper cells differentiate from Th2 cells in response to helminth antigens[J]. J Exp Med, 2009, 206(5): 991-999. DOI: 10.1126/sciimmunol.aan8884.
|
[17] |
KLEIN F, MOUQUET H, DOSENOVIC P, et al. Antibodies in HIV-1 vaccine development and therapy[J]. Science, 2013, 341(6151): 1199-1204. DOI: 10.1126/science.1241144.
|
[18] |
HANSEN DS, OBENG-ADJEI N, LY A, et al. Emerging concepts in T follicular helper cell responses to malaria[J]. Int J Parasitol, 2017, 47(2-3): 105-110. DOI: 10.1016/j.ijpara.2016.09.004.
|
[19] |
DÍAZ A, CASARAVILLA C, ALLEN JE, et al. Understanding the laminated layer of larval Echinococcus Ⅱ: Immunology[J]. Trends Parasitol, 2011, 27(6): 264-273. DOI: 10.1016/j.pt.2011.01.008.
|
[20] |
HOU YJ, ZHANG LQ, FAN HN. Research advances in circulating free DNA in liver cancer and liver-related parasitic diseases[J]. J Clin Hepatol, 2020, 36(2): 430-432. DOI: 10.3969/j.issn.1001-5256.2020.02.043.
后亚军, 张灵强, 樊海宁. 循环游离DNA在肝癌和肝相关性寄生虫病中的应用进展[J]. 临床肝胆病杂志, 2020, 36(2): 430-432. DOI: 10.3969/j.issn.1001-5256.2020.02.043.
|
[21] |
WANG ZX, GOU P, YU WH, et al. Measurement and bioinformatics analysis of exosomes microRNAs in bile of hepatic alveolar echinococcosis patients with biliary tract invasion[J]. J Clin Hepatol, 2020, 36(9): 2045-2049. DOI: 10.3969/j.issn.1001-5256.2020.09.027.
王志鑫, 苟平, 于文昊, 等. 肝泡型包虫病侵及胆道患者胆汁外泌体microRNA的检测及生物信息学分析[J]. 临床肝胆病杂志, 2020, 36(9): 2045-2049. DOI: 10.3969/j.issn.1001-5256.2020.09.027.
|
[22] |
DING JB, LI YJ, ZHANG FB. Research progress of hydatidosis immunity and vaccine[J]. J Xinjiang Med Univ, 2019, 42(1): 24-28. DOI: 10.3969/j.issn.1009-5551.2019.01.005.
丁剑冰, 李玉娇, 张峰波. 包虫病免疫及疫苗的研究进展[J]. 新疆医科大学学报, 2019, 42(1): 24-28. DOI: 10.3969/j.issn.1009-5551.2019.01.005.
|
临床资料 | KRAS突变型 (n=34) |
KRAS野生型 (n=63) |
统计值 | P值 |
性别(例) | χ2=0.370 | 0.543 | ||
男 | 20 | 41 | ||
女 | 14 | 22 | ||
年龄(岁) | 55.12±14.21 | 56.93±10.04 | t=0.730 | 0.468 |
乙型肝炎病史(例) | χ2=0.057 | 0.811 | ||
阴性 | 30 | 56 | ||
阳性 | 4 | 7 | ||
ALT(U/L) | 49.85±14.20 | 51.24±15.22 | t=0.439 | 0.662 |
凝血酶原时间(s) | 12.83±1.84 | 13.02±2.10 | t=0.443 | 0.659 |
总胆红素(mmol/L) | 17.94±3.73 | 18.05±3.16 | t=0.153 | 0.878 |
白蛋白(g/L) | 40.27±6.49 | 40.53±5.98 | t=0.198 | 0.843 |
AFP(ng/L) | 438.95±109.32 | 409.64±97.58 | t=1.353 | 0.179 |
肿瘤大小(cm) | 7.39±2.30 | 7.02±2.15 | t=0.789 | 0.432 |
肝硬化(例) | χ2=0.035 | 0.852 | ||
有 | 27 | 49 | ||
无 | 7 | 14 | ||
肝内转移(例) | χ2=3.965 | 0.047 | ||
有 | 16 | 17 | ||
无 | 18 | 46 | ||
肿瘤数目(例) | χ2=6.593 | 0.010 | ||
单个 | 23 | 56 | ||
多个 | 11 | 7 | ||
腹水(例) | χ2=0.057 | 0.811 | ||
无 | 31 | 55 | ||
有 | 3 | 8 | ||
Child-Pugh分级(例) | χ2=0.056 | 0.812 | ||
A | 24 | 43 | ||
B | 10 | 20 | ||
BCLC分期(例) | χ2=0.074 | 0.785 | ||
B | 22 | 39 | ||
C | 12 | 24 |
自变量 | RR | 95%CI | P值 |
性别(男性=0,女性=1) | 2.734 | 0.983~7.935 | 0.283 |
年龄(≥60岁=0,<60岁=1) | 3.038 | 0.627~10.293 | 0.276 |
KRAS基因状态(突变型=0,野生型=1) | 18.273 | 5.584~98.305 | 0.001 |
乙型肝炎病史(有=0,无=1) | 5.484 | 0.719~9.380 | 0.193 |
ALT(≥40 U/L=0,<40 U/L=1) | 2.079 | 0.417~12.953 | 0.389 |
凝血酶原时间(≥12 s=0,<12 s=1) | 1.092 | 0.271~9.182 | 0.849 |
总胆红素(≥18 nmol/L=0,<18 nmol/L=1) |
1.684 | 0.495~7.293 | 0.711 |
白蛋白(≥40 g/L=0,<40 g/L=1) | 2.087 | 0.408~11.235 | 0.419 |
AFP(≥400 ng/L=0,<400 ng/L=1) | 2.193 | 0.602~11.293 | 0.619 |
肿瘤大小(≥7 cm=0,<7 cm=1) | 2.183 | 0.485~7.304 | 0.280 |
肝硬化(有=0,无=1) | 1.804 | 0.198~10.237 | 0.695 |
肝内转移(有=0,无=1) | 11.475 | 3.029~56.490 | 0.018 |
肿瘤数目(单发=0,多发=1) | 10.038 | 2.973~19.328 | 0.021 |
腹水(有=0,无=1) | 2.013 | 0.421~8.106 | 0.174 |
Child-Pugh分级(A=0,B=1) | 2.189 | 0.569~7.491 | 0.209 |
BCLC分期(B=0,C=1) | 12.384 | 2.385~29.305 | 0.011 |
临床资料 | KRAS突变型 (n=34) |
KRAS野生型 (n=63) |
统计值 | P值 |
性别(例) | χ2=0.370 | 0.543 | ||
男 | 20 | 41 | ||
女 | 14 | 22 | ||
年龄(岁) | 55.12±14.21 | 56.93±10.04 | t=0.730 | 0.468 |
乙型肝炎病史(例) | χ2=0.057 | 0.811 | ||
阴性 | 30 | 56 | ||
阳性 | 4 | 7 | ||
ALT(U/L) | 49.85±14.20 | 51.24±15.22 | t=0.439 | 0.662 |
凝血酶原时间(s) | 12.83±1.84 | 13.02±2.10 | t=0.443 | 0.659 |
总胆红素(mmol/L) | 17.94±3.73 | 18.05±3.16 | t=0.153 | 0.878 |
白蛋白(g/L) | 40.27±6.49 | 40.53±5.98 | t=0.198 | 0.843 |
AFP(ng/L) | 438.95±109.32 | 409.64±97.58 | t=1.353 | 0.179 |
肿瘤大小(cm) | 7.39±2.30 | 7.02±2.15 | t=0.789 | 0.432 |
肝硬化(例) | χ2=0.035 | 0.852 | ||
有 | 27 | 49 | ||
无 | 7 | 14 | ||
肝内转移(例) | χ2=3.965 | 0.047 | ||
有 | 16 | 17 | ||
无 | 18 | 46 | ||
肿瘤数目(例) | χ2=6.593 | 0.010 | ||
单个 | 23 | 56 | ||
多个 | 11 | 7 | ||
腹水(例) | χ2=0.057 | 0.811 | ||
无 | 31 | 55 | ||
有 | 3 | 8 | ||
Child-Pugh分级(例) | χ2=0.056 | 0.812 | ||
A | 24 | 43 | ||
B | 10 | 20 | ||
BCLC分期(例) | χ2=0.074 | 0.785 | ||
B | 22 | 39 | ||
C | 12 | 24 |
自变量 | RR | 95%CI | P值 |
性别(男性=0,女性=1) | 2.734 | 0.983~7.935 | 0.283 |
年龄(≥60岁=0,<60岁=1) | 3.038 | 0.627~10.293 | 0.276 |
KRAS基因状态(突变型=0,野生型=1) | 18.273 | 5.584~98.305 | 0.001 |
乙型肝炎病史(有=0,无=1) | 5.484 | 0.719~9.380 | 0.193 |
ALT(≥40 U/L=0,<40 U/L=1) | 2.079 | 0.417~12.953 | 0.389 |
凝血酶原时间(≥12 s=0,<12 s=1) | 1.092 | 0.271~9.182 | 0.849 |
总胆红素(≥18 nmol/L=0,<18 nmol/L=1) |
1.684 | 0.495~7.293 | 0.711 |
白蛋白(≥40 g/L=0,<40 g/L=1) | 2.087 | 0.408~11.235 | 0.419 |
AFP(≥400 ng/L=0,<400 ng/L=1) | 2.193 | 0.602~11.293 | 0.619 |
肿瘤大小(≥7 cm=0,<7 cm=1) | 2.183 | 0.485~7.304 | 0.280 |
肝硬化(有=0,无=1) | 1.804 | 0.198~10.237 | 0.695 |
肝内转移(有=0,无=1) | 11.475 | 3.029~56.490 | 0.018 |
肿瘤数目(单发=0,多发=1) | 10.038 | 2.973~19.328 | 0.021 |
腹水(有=0,无=1) | 2.013 | 0.421~8.106 | 0.174 |
Child-Pugh分级(A=0,B=1) | 2.189 | 0.569~7.491 | 0.209 |
BCLC分期(B=0,C=1) | 12.384 | 2.385~29.305 | 0.011 |